| 中文摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 第一部分 iPSCs向类生殖细胞分化的体外研究 | 第16-29页 |
| 1. 材料和方法 | 第16-24页 |
| 1.1 材料和仪器 | 第16-18页 |
| 1.2 实验方法 | 第18-23页 |
| 1.3 统计学方法 | 第23-24页 |
| 2. 结果 | 第24-26页 |
| 2.1 共培养后iPS细胞形态变化 | 第24页 |
| 2.2 ELISA方法检测培养液中E_2变化 | 第24-25页 |
| 2.3 RT-PCR生殖相关基因检测 | 第25-26页 |
| 3. 讨论 | 第26-28页 |
| 4. 小结 | 第28-29页 |
| 第二部分 构建并评价化疗所致卵巢早衰的小鼠模型 | 第29-44页 |
| 1. 材料和方法 | 第29-35页 |
| 1.1 材料和仪器 | 第29-30页 |
| 1.2 实验方法 | 第30-31页 |
| 1.3 实验动物及分组 | 第31页 |
| 1.4 实验观察 | 第31-32页 |
| 1.5 实验取材 | 第32页 |
| 1.6 卵巢湿重比较 | 第32页 |
| 1.7 小鼠血清FSH、E2测定 | 第32-33页 |
| 1.8 石蜡切片 | 第33页 |
| 1.9 卵巢组织HE染色形态学观察 | 第33-34页 |
| 1.10 卵泡计数 | 第34页 |
| 1.11 统计分析 | 第34-35页 |
| 2. 结果 | 第35-40页 |
| 2.1 小鼠一般情况监测 | 第35页 |
| 2.2 体重 | 第35-36页 |
| 2.3 生存曲线 | 第36页 |
| 2.4 卵巢湿重比较 | 第36-37页 |
| 2.5 动情周期监测 | 第37-38页 |
| 2.6 性激素FSH.E_2测定 | 第38-39页 |
| 2.7 卵巢组织HE染色形态学观察 | 第39页 |
| 2.8 卵泡计数 | 第39-40页 |
| 3. 讨论 | 第40-43页 |
| 3.1 化疗造模药物的选择 | 第40页 |
| 3.2 造模剂量及方式的选择 | 第40-41页 |
| 3.3 化疗造模的有效性评价 | 第41-43页 |
| 4. 小结 | 第43-44页 |
| 第三部分 移植iPSC修复化疗所致卵巢早衰的动物实验研究 | 第44-62页 |
| 1. 材料和方法 | 第44-51页 |
| 1.1 仪器和材料 | 第44-46页 |
| 1.2 实验方法 | 第46-47页 |
| 1.3 实验观察 | 第47-50页 |
| 1.4 统计学方法 | 第50-51页 |
| 2. 结果 | 第51-58页 |
| 2.1 小鼠一般情况监测 | 第51页 |
| 2.2 体重变化 | 第51页 |
| 2.3 血清性激素测定 | 第51-52页 |
| 2.4 卵巢湿重比较 | 第52-53页 |
| 2.5 卵巢组织HE染色形态学观察 | 第53页 |
| 2.6 iPS细胞PKH26染色荧光检测 | 第53-54页 |
| 2.7 荧光ips定位检测 | 第54页 |
| 2.8 生殖细胞特有指标：Mvh免疫荧光检测 | 第54-56页 |
| 2.9 IPS特有基因：Tet-on基因检测 | 第56页 |
| 2.10 远期生殖能力比较 | 第56-57页 |
| 2.11 子代小鼠大体观察及Tet-on基因检测 | 第57-58页 |
| 3. 讨论 | 第58-61页 |
| 4. 小结 | 第61-62页 |
| 总结及展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-71页 |
| 附录：缩略语中英文对照词表 | 第71-72页 |
| 附录：综述 | 第72-81页 |
| 参考文献 | 第78-81页 |
| 研究生在读期间工作 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82-84页 |