| 摘要 | 第10-12页 |
| 英文摘要 | 第12-14页 |
| 1 引言 | 第15-27页 |
| 1.1 黄曲霉毒素概述 | 第15-17页 |
| 1.1.1 黄曲霉毒素的发现 | 第15页 |
| 1.1.2 黄曲霉毒素的理化性质 | 第15-16页 |
| 1.1.3 黄曲霉毒素的危害 | 第16-17页 |
| 1.2 黄曲霉毒素B1的代谢 | 第17页 |
| 1.3 黄曲霉毒素的半数致死量、残留限量以及残留消除研究 | 第17-20页 |
| 1.3.1 半数致死量 | 第17-18页 |
| 1.3.2 残留限量 | 第18-20页 |
| 1.3.3 黄曲霉毒素残留消除的研究 | 第20页 |
| 1.4 黄曲霉毒素的前处理方法 | 第20-21页 |
| 1.4.1 黄曲霉毒素的提取 | 第20页 |
| 1.4.2 黄曲霉毒素的净化 | 第20-21页 |
| 1.5 黄曲霉毒素的检测方法 | 第21-25页 |
| 1.5.1 薄层色谱法 | 第21-22页 |
| 1.5.2 荧光光度法 | 第22页 |
| 1.5.3 酶联免疫吸附法 | 第22-23页 |
| 1.5.4 液相色谱法 | 第23-24页 |
| 1.5.5 液相色谱串联质谱法 | 第24页 |
| 1.5.6 其他方法 | 第24-25页 |
| 1.6 姜黄素研究进展 | 第25-26页 |
| 1.6.1 姜黄素的抗氧化作用 | 第25页 |
| 1.6.2 姜黄素的抗炎作用 | 第25页 |
| 1.6.3 姜黄素的抗肿瘤作用 | 第25页 |
| 1.6.4 姜黄素的其他作用 | 第25-26页 |
| 1.7 研究目的与意义 | 第26-27页 |
| 2 材料和方法 | 第27-33页 |
| 2.1 试验材料 | 第27-28页 |
| 2.1.1 试剂与药品 | 第27页 |
| 2.1.2 免疫亲和柱 | 第27页 |
| 2.1.3 试验动物 | 第27页 |
| 2.1.4 试验仪器 | 第27-28页 |
| 2.1.5 试剂的配制 | 第28页 |
| 2.2 肌肉、肝脏和肾脏中AFB1和AFM1检测方法的建立 | 第28-30页 |
| 2.2.1 前处理条件的优化 | 第28-29页 |
| 2.2.2 色谱条件优化 | 第29页 |
| 2.2.3 检测方法的确定 | 第29页 |
| 2.2.4 方法学考察 | 第29-30页 |
| 2.3 模型组与姜黄素干预组肉鸡三种组织中AFB1及其代谢物AFM1的残留检测 | 第30-31页 |
| 2.3.1 饲料准备 | 第30-31页 |
| 2.3.2 动物分组及处理 | 第31页 |
| 2.3.3 前处理方法 | 第31页 |
| 2.3.4 检测条件 | 第31页 |
| 2.4 模型组与干预组肉鸡三种组织中AFB1及其代谢物AFM1的残留消除时间分析 | 第31-32页 |
| 2.5 数据处理与统计学分析 | 第32-33页 |
| 3 结果 | 第33-53页 |
| 3.1 前处理的优化 | 第33-34页 |
| 3.1.1 提取溶剂的选择 | 第33页 |
| 3.1.2 震荡时间的选择 | 第33-34页 |
| 3.1.3 亲和柱的选择 | 第34页 |
| 3.1.4 定溶液的选择 | 第34页 |
| 3.2 色谱条件的优化 | 第34-36页 |
| 3.2.1 流动相的选择 | 第34-35页 |
| 3.2.2 流速的选择 | 第35页 |
| 3.2.3 柱温的选择 | 第35页 |
| 3.2.4 检测波长的选择 | 第35-36页 |
| 3.3 样品提取与检测条件的确定 | 第36页 |
| 3.4 方法学考察结果 | 第36-40页 |
| 3.4.1 AFB1和AFM1色谱图 | 第36-38页 |
| 3.4.2 AFB1和AFM1的线性方程 | 第38-39页 |
| 3.4.3 AFB1和AFM1的保留时间及其变异系数 | 第39页 |
| 3.4.4 回收率和精密度 | 第39-40页 |
| 3.4.5 检测限与定量限 | 第40页 |
| 3.5 模型组与姜黄素干预组肉鸡肝脏、肾脏和肌肉中AFB1和AFM1含量的检测 | 第40-45页 |
| 3.5.1 肝脏中AFB1和AFM1残留检测结果 | 第41-42页 |
| 3.5.2 肾脏中AFB1和AFM1残留检测结果 | 第42-43页 |
| 3.5.3 肌肉中AFB1和AFM1残留检测结果 | 第43-45页 |
| 3.6 模型组与干预组肉鸡三种组织中AFB1和AFM1残留消除时间（WT）分析 | 第45-53页 |
| 3.6.1 以LOQ为MRL计算的AFB1的残留消除时间（WT） | 第45-48页 |
| 3.6.2 以LOD为MRL计算的AFB1的残留消除时间（WT） | 第48-50页 |
| 3.6.3 以LOD为MRL计算的AFM1的残留消除时间（WT） | 第50-53页 |
| 4 讨论 | 第53-57页 |
| 4.1 肉鸡组织中AFB1和AFM1提取的前处理条件优化 | 第53-54页 |
| 4.1.1 提取溶剂 | 第53页 |
| 4.1.2 震荡时间 | 第53页 |
| 4.1.3 免疫亲和柱 | 第53-54页 |
| 4.1.4 衍生化以及定溶液 | 第54页 |
| 4.2 色谱条件的选择 | 第54页 |
| 4.3 方法学考察 | 第54-55页 |
| 4.4 模型组与干预组组织残留情况分析 | 第55-56页 |
| 4.5 消除分析 | 第56-57页 |
| 5 结论 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-66页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第66页 |
