| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第11-23页 |
| 1.1 miRNA概述 | 第11-15页 |
| 1.1.1 miRNA的生物合成及作用机制 | 第11-12页 |
| 1.1.2 miRNA的生物学功能 | 第12-13页 |
| 1.1.3 miRNA与类风湿关节炎 | 第13-14页 |
| 1.1.4 miRNA与其他自身免疫性疾病 | 第14-15页 |
| 1.2 类风湿关节炎概述 | 第15-18页 |
| 1.2.1 类风湿关节炎及其动物模型 | 第15-17页 |
| 1.2.2 类风湿关节炎与CD4~+T细胞 | 第17-18页 |
| 1.3 MDSC概述 | 第18-21页 |
| 1.3.1 MDSC的起源与表型 | 第18页 |
| 1.3.2 MDSC的活化与扩增 | 第18-19页 |
| 1.3.3 MDSC与类风湿关节炎 | 第19-20页 |
| 1.3.4 MDSC与其他自身免疫性疾病 | 第20-21页 |
| 1.4 本研究的目的、实验设计及意义 | 第21-23页 |
| 1.4.1 研究目的 | 第21页 |
| 1.4.2 研究方法 | 第21页 |
| 1.4.3 实验设计 | 第21-22页 |
| 1.4.4 研究意义 | 第22-23页 |
| 第二章 microRNAs在活化的小鼠CD4~+T细胞中的表达分析 | 第23-35页 |
| 2.1 材料 | 第23-25页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第23页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.3 其他试剂 | 第24页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第24-25页 |
| 2.2 方法 | 第25-30页 |
| 2.2.1 CIA小鼠模型的建立 | 第25-26页 |
| 2.2.2 脾脏单个核细胞的分离 | 第26页 |
| 2.2.3 免疫磁珠法阴选脾脏CD4~+T细胞 | 第26-27页 |
| 2.2.4 CD3/CD28免疫磁珠法活化小鼠CD4~+T细胞 | 第27页 |
| 2.2.5 流式细胞术检测小鼠脾脏CD4~+T细胞的比例及活化率 | 第27-28页 |
| 2.2.6 实时荧光定量PCR检测miRNA的表达水平 | 第28-30页 |
| 2.2.7 统计学处理 | 第30页 |
| 2.3 结果 | 第30-32页 |
| 2.3.1 CIA小鼠脾脏CD4~+T细胞比例分析 | 第30-31页 |
| 2.3.2 CD3/CD28免疫磁珠法刺激后小鼠脾脏CD4~+T细胞活化情况 | 第31页 |
| 2.3.3 CD4~+T细胞活化状态下miR3423p、miR-181d、miR1223p、miR95p的表达水平 | 第31-32页 |
| 2.4 讨论 | 第32-35页 |
| 第三章 microRNAs在活化的小鼠MDSC中的表达分析 | 第35-46页 |
| 3.1 材料 | 第35-37页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第35页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第35-36页 |
| 3.1.3 其他试剂 | 第36页 |
| 3.1.4 主要仪器 | 第36-37页 |
| 3.2 方法 | 第37-39页 |
| 3.2.1 CIA小鼠模型的建立 | 第37页 |
| 3.2.2 CIA小鼠骨髓、脾脏及外周血细胞悬液的制备 | 第37页 |
| 3.2.3 流式细胞术检测CIA小鼠骨髓、脾脏及外周血MDSC的百分比 | 第37页 |
| 3.2.4 体外诱导骨髓MDSC扩增 | 第37-38页 |
| 3.2.5 实时荧光定量PCR检测Arg-1、iNOS的mRNA水平 | 第38-39页 |
| 3.2.6 实时荧光定量PCR技术检测miRNA的表达水平 | 第39页 |
| 3.2.7 统计学处理 | 第39页 |
| 3.3 结果 | 第39-42页 |
| 3.3.1 CIA小鼠骨髓、脾脏、外周血MDSC比例分析 | 第39-41页 |
| 3.3.2 体外诱导骨髓MDSC的活化与扩增 | 第41-42页 |
| 3.3.3 骨髓MDSC体外活化扩增后miR3423p、miR-181d、miR1223p、miR95p的表达水平 | 第42页 |
| 3.4 讨论 | 第42-46页 |
| 第四章 主要结论与展望 | 第46-47页 |
| 4.1 主要结论 | 第46页 |
| 4.2 展望 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第52页 |
