| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第15-17页 |
| 前言 | 第17-20页 |
| 研究现状、成果 | 第17-19页 |
| 研究目的、方法 | 第19-20页 |
| 一、粪菌移植促进无菌小鼠胃肠动力 | 第20-65页 |
| 1.1 实验对象 | 第21-27页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第21页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第21-23页 |
| 1.1.3 主要仪器设备及耗材 | 第23-25页 |
| 1.1.4 主要溶液的配制 | 第25-27页 |
| 1.2 实验方法 | 第27-41页 |
| 1.2.1 实验小鼠的饲养 | 第27-28页 |
| 1.2.2 动物分组、干预方法及标本留取方法 | 第28-31页 |
| 1.2.2.1 动物分组 | 第28-29页 |
| 1.2.2.2 制备粪菌移植菌液 | 第29页 |
| 1.2.2.3 粪菌移植方法 | 第29页 |
| 1.2.2.4 标本留取方法 | 第29-31页 |
| 1.2.3 全胃肠道通过时间测定 | 第31页 |
| 1.2.4 胃排空测定（G.E.%） | 第31-32页 |
| 1.2.5 胃肠道病理组织学制备及观察方法 | 第32-35页 |
| 1.2.5.1 胃肠道组织石蜡切片制备 | 第33-34页 |
| 1.2.5.2 胃肠道病理组织学观察 | 第34-35页 |
| 1.2.6 免疫组织化学染色 | 第35-36页 |
| 1.2.7 组织Realtime-PCR技术 | 第36-39页 |
| 1.2.8 提取脾脏淋巴细胞方法 | 第39页 |
| 1.2.9 提取肠道淋巴细胞方法 | 第39-40页 |
| 1.2.10 流式细胞术 | 第40-41页 |
| 1.3 统计学方法 | 第41页 |
| 1.4 结果 | 第41-59页 |
| 1.4.1 粪菌移植对小鼠生长状况的影响 | 第41-42页 |
| 1.4.2 粪菌移植导致小鼠胃肠道组织学改变 | 第42-47页 |
| 1.4.2.1 粪菌移植对无菌小鼠胃肠道组织病理学影响 | 第42-44页 |
| 1.4.2.2 粪菌移植对无菌小鼠胃肠道粘膜厚度的影响 | 第44-47页 |
| 1.4.3 粪菌移植对全胃肠道通过时间的影响 | 第47-48页 |
| 1.4.4 粪菌移植对胃排空的影响 | 第48-49页 |
| 1.4.5 粪菌移植对无菌小鼠免疫及防御机制的影响 | 第49-59页 |
| 1.4.5.1 粪菌移植对无菌小鼠免疫系统的影响 | 第49-53页 |
| 1.4.5.2 粪菌移植对无菌小鼠小肠免疫系统的影响 | 第53-56页 |
| 1.4.5.3 粪菌移植可增加无菌小鼠IL22的表达 | 第56-57页 |
| 1.4.5.4 粪菌移植对无菌小鼠Reg蛋白表达的影响 | 第57-59页 |
| 1.5 讨论 | 第59-64页 |
| 1.5.1 粪菌移植动物模型的建立 | 第60页 |
| 1.5.2 肠道菌群与胃肠动力密切相关 | 第60-62页 |
| 1.5.3 肠道菌群与肠道免疫间的相互作用 | 第62-64页 |
| 1.5.3.1 IL22的免疫机制 | 第62页 |
| 1.5.3.2 Reg蛋白的抗微生物作用 | 第62-63页 |
| 1.5.3.3 IL22对Reg蛋白的调节作用 | 第63-64页 |
| 1.6 小结 | 第64-65页 |
| 二、粪菌移植通过5-HT/巨噬细胞途径调控胃肠动力 | 第65-94页 |
| 2.1 实验对象 | 第65-69页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第65页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第65-67页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第67-69页 |
| 2.1.4 主要溶液配制 | 第69页 |
| 2.2 实验方法 | 第69-73页 |
| 2.2.1 实验小鼠的饲养 | 第69页 |
| 2.2.2 动物分组、干预方法及标本留取方法 | 第69-70页 |
| 2.2.2.1 动物分组 | 第69-70页 |
| 2.2.2.2 制备粪菌移植菌液 | 第70页 |
| 2.2.2.3 粪菌移植方法 | 第70页 |
| 2.2.2.4 标本留取方法 | 第70页 |
| 2.2.3 全胃肠道病理组织学制备及观察方法 | 第70-71页 |
| 2.2.3.1 胃肠道组织石蜡切片制备 | 第71页 |
| 2.2.3.2 胃肠道病理组织学观察 | 第71页 |
| 2.2.4 免疫组织化学染色 | 第71-72页 |
| 2.2.5 免疫组织荧光染色 | 第72-73页 |
| 2.2.6 组织Realtime-PCR技术 | 第73页 |
| 2.2.7 全胃肠道通过时间测定 | 第73页 |
| 2.3 统计学方法 | 第73页 |
| 2.4 结果 | 第73-91页 |
| 2.4.1 粪菌移植可导致无菌小鼠5-HT及相关因子水平的变化 | 第73-79页 |
| 2.4.2 粪菌移植对无菌小鼠全胃肠道通过时间的影响 | 第79-81页 |
| 2.4.3 粪菌移植对肠道巨噬细胞的影响 | 第81-87页 |
| 2.4.3.1 粪菌移植对小鼠胃肠道巨噬细胞表达的影响 | 第81-82页 |
| 2.4.3.2 粪菌移植可向小鼠胃肠道肌层招募巨噬细胞 | 第82-83页 |
| 2.4.3.3 粪菌移植对小鼠胃肠道巨噬细胞表型的影响 | 第83-84页 |
| 2.4.3.4 粪菌移植对小鼠胃肠道M2巨噬细胞表达量的影响 | 第84-87页 |
| 2.4.4 粪菌移植后胃肠动力影响因素相关性分析 | 第87-90页 |
| 2.4.4.1 5-HT与胃肠动力相关性分析 | 第87-88页 |
| 2.4.4.2 M2巨噬细胞与胃肠动力相关性分析 | 第88-90页 |
| 2.4.5 粪菌移植影响胃肠动力可能性机制分析 | 第90-91页 |
| 2.4.5.1 5-HT与M2巨噬细胞间的相关性分析 | 第90-91页 |
| 2.4.5.2 肌层巨噬细胞调控胃肠道肌层神经元传递动力信号 | 第91页 |
| 2.5 讨论 | 第91-93页 |
| 2.6 小结 | 第93-94页 |
| 三、粪菌移植通过影响GLP-1/GLP-1r途径调控胃肠动力 | 第94-113页 |
| 3.1 实验对象 | 第94-98页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第94页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第94-96页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第96-97页 |
| 3.1.4 主要溶液配制 | 第97-98页 |
| 3.2 实验方法 | 第98-102页 |
| 3.2.1 实验小鼠的饲养 | 第98页 |
| 3.2.2 动物分组、干预方法及标本留取方法 | 第98-99页 |
| 3.2.2.1 动物分组 | 第98页 |
| 3.2.2.2 制备粪菌移植菌液 | 第98页 |
| 3.2.2.3 粪菌移植方法 | 第98-99页 |
| 3.2.2.4 标本留取方法 | 第99页 |
| 3.2.3 胃肠道病理组织学制备及观察方法 | 第99-100页 |
| 3.2.3.1 胃肠道组织石蜡切片制备 | 第99-100页 |
| 3.2.3.2 胃肠道病理组织学观察 | 第100页 |
| 3.2.4 免疫组织化学染色 | 第100页 |
| 3.2.5 免疫组织荧光双染 | 第100-101页 |
| 3.2.6 组织Realtime-PCR技术 | 第101-102页 |
| 3.2.7 全胃肠道通过时间测定 | 第102页 |
| 3.3 统计学方法 | 第102页 |
| 3.4 结果 | 第102-110页 |
| 3.4.1 粪菌移植对胃肠激素GLP-1的影响 | 第102-104页 |
| 3.4.2 粪菌移植影响无菌小鼠胃肠道组织GLP-1受体的表达 | 第104-106页 |
| 3.4.3 粪菌移植导致小鼠肠道神经细胞水平的变化 | 第106页 |
| 3.4.4 粪菌移植改变小鼠肌层神经细胞GLP-1受体的表达水平 | 第106-108页 |
| 3.4.5 粪菌移植改变无菌小鼠全胃肠道通过时间 | 第108页 |
| 3.4.6 粪菌移植后胃肠动力改变与胃肠激素GLP-1及其受体间相关性分析 | 第108-110页 |
| 3.4.6.1 胃肠动力改变与胃肠激素GLP-1水平无相关性 | 第108页 |
| 3.4.6.2 胃肠动力改变与胃肠激素GLP-1受体水平呈相关性 | 第108-109页 |
| 3.4.6.3 胃肠激素GLP-1对胃肠动力的调节呈GLP-1受体依赖性 | 第109-110页 |
| 3.5 讨论 | 第110-111页 |
| 3.6 小结 | 第111-113页 |
| 全文结论 | 第113-115页 |
| 论文创新点 | 第115-116页 |
| 参考文献 | 第116-124页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第124-125页 |
| 综述 肠道内分泌细胞通过GLP-1参与代谢和免疫系统疾病 | 第125-144页 |
| 综述参考文献 | 第135-144页 |
| 致谢 | 第144-145页 |
| 个人简历 | 第145页 |
