| 中文摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 第一章 绪论 | 第14-47页 |
| §1.1上转换纳米材料的组成 | 第14-17页 |
| 1.1.1 基质 | 第14-15页 |
| 1.1.2 激活剂 | 第15-16页 |
| 1.1.3 敏化剂 | 第16-17页 |
| §1.2 发光机理 | 第17-19页 |
| 1.2.1 激发态吸收 | 第17页 |
| 1.2.2 能量传递上转换 | 第17-18页 |
| 1.2.3 光子雪崩 | 第18-19页 |
| §1.3 合成方法 | 第19-23页 |
| 1.3.1 热分解法 | 第19-20页 |
| 1.3.2 水热法 | 第20-21页 |
| 1.3.3 高温共沉淀法 | 第21-22页 |
| 1.3.4 基于离子液体法 | 第22-23页 |
| §1.4 表面改性 | 第23-27页 |
| 1.4.1 配体交换 | 第23-25页 |
| 1.4.2 无机壳层包覆 | 第25-26页 |
| 1.4.3 配体氧化 | 第26页 |
| 1.4.4 配体吸附 | 第26-27页 |
| §1.5 上转换纳米材料在生物传感方面的应用 | 第27-40页 |
| 1.5.1 蛋白测定 | 第28-30页 |
| 1.5.2 核酸检测 | 第30-35页 |
| 1.5.3 其他物质测定 | 第35-40页 |
| §1.6 本论文的出发点和主要工作 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 第二章 一种简单的基于上转换荧光共振能量转移的生物传感的构建 | 第47-66页 |
| 2.1 前言 | 第47-49页 |
| 2.2 实验部分 | 第49-51页 |
| 2.2.1 实验试剂和仪器 | 第49页 |
| 2.2.2 油酸包覆的UCNPs(OA-UCNPs)的合成 | 第49-50页 |
| 2.2.3 将OA-UCNPs转化为PAA-UCNPs | 第50页 |
| 2.2.4 PAH-PAA-UCNPs (ppUCNPs)的制备 | 第50页 |
| 2.2.5 Aptamer和ppUCNPs的连接 | 第50页 |
| 2.2.6 溶菌酶的检测 | 第50-51页 |
| 2.2.7 实际样品的检测 | 第51页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第51-63页 |
| 2.3.1 原理 | 第51-53页 |
| 2.3.2 材料的表征 | 第53-56页 |
| 2.3.3 条件的优化 | 第56-58页 |
| 2.3.4 溶菌酶标准品的测定 | 第58-60页 |
| 2.3.5 特异性实验 | 第60页 |
| 2.3.6 实际样品中溶菌酶的测定 | 第60-62页 |
| 2.3.7 目标DNA的测定 | 第62-63页 |
| 2.4 结论 | 第63页 |
| 参考文献 | 第63-66页 |
| 第三章 一种基于上转换荧光共振能量转移的成人血清中胆固醇传感的构建 | 第66-81页 |
| 3.1 前言 | 第66-67页 |
| 3.2 实验部分 | 第67-69页 |
| 3.2.1 实验试剂和仪器 | 第67-68页 |
| 3.2.2 油酸包覆的UCNPs(OA-UCNPs)的合成 | 第68页 |
| 3.2.3 无配体UCNPs的制备 | 第68页 |
| 3.2.4 CD-Cit的制备 | 第68页 |
| 3.2.5 CD-Cit-UCNPs的制备 | 第68-69页 |
| 3.2.6 RB-CD-Cit-UCNPs的制备 | 第69页 |
| 3.2.7 胆固醇的检测 | 第69页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第69-78页 |
| 3.3.1 原理 | 第69-71页 |
| 3.3.2 材料的表征 | 第71-75页 |
| 3.3.3 反应时间的考察 | 第75-76页 |
| 3.3.4 胆固醇标准品的测定 | 第76-77页 |
| 3.3.5 特异性实验 | 第77-78页 |
| 3.3.6 成人血清中胆固醇的测定 | 第78页 |
| 3.4 结论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-81页 |
| 第四章 基于上转换纳米材料与金纳米颗粒的荧光共振能量转移对Hepatitis B virus (HBV)DNA的检测 | 第81-104页 |
| 4.1 前言 | 第81-82页 |
| 4.2 实验部分 | 第82-85页 |
| 4.2.1 实验试剂和仪器 | 第82-83页 |
| 4.2.2 PEI修饰的UCNPs(NH_2-UCNPs)的合成 | 第83页 |
| 4.2.3 Au纳米粒子(Au NPs)的制备 | 第83-84页 |
| 4.2.4 NH_2-UCNPs与sequence 1的连接 | 第84页 |
| 4.2.5 Au NPs与sequence 2的连接 | 第84页 |
| 4.2.6 UCNPs-seq 1与Au NPs-seq 2的杂交 | 第84页 |
| 4.2.7 目标DNA的检测 | 第84-85页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第85-100页 |
| 4.3.1 原理 | 第85-86页 |
| 4.3.2 NH_2-UCNPs制备过程中的影响因素 | 第86-94页 |
| 4.3.2.1 F的用量 | 第86-88页 |
| 4.3.2.2 反应时间 | 第88-91页 |
| 4.3.2.3 反应温度 | 第91-92页 |
| 4.3.2.4 PEI用量 | 第92-94页 |
| 4.3.3 NH_2-UCNPs的表征以及与sequence 1的连接 | 第94-97页 |
| 4.3.4 Au NPs的表征 | 第97页 |
| 4.3.5 Au NPs-seq 2对UCNPs-seq 1的猝灭 | 第97-98页 |
| 4.3.6 目标DNA的测定 | 第98-99页 |
| 4.3.7 特异性实验 | 第99-100页 |
| 4.4 结论 | 第100页 |
| 参考文献 | 第100-104页 |
| 附录 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
