| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 引言 | 第15-17页 |
| 第1章 文献研究 | 第17-21页 |
| 1.1 脑胶质瘤的简述 | 第17页 |
| 1.1.1 脑胶质瘤的定义 | 第17页 |
| 1.1.2 脑胶质瘤的分类 | 第17页 |
| 1.1.3 脑胶质瘤的临床表现 | 第17页 |
| 1.2 脑胶质瘤的病因和病理机制 | 第17-19页 |
| 1.2.1 现代医学对脑胶质瘤病因病机的认识 | 第18页 |
| 1.2.2 脑胶质瘤的MAPKs信号转导通路研究 | 第18-19页 |
| 1.3 传统中医对脑胶质瘤的认识 | 第19页 |
| 1.4 脑胶质瘤的常规治疗 | 第19-21页 |
| 1.4.1 手术治疗 | 第19-20页 |
| 1.4.2 化学药物治疗 | 第20页 |
| 1.4.3 中医药治疗 | 第20页 |
| 1.4.4 其他治疗 | 第20-21页 |
| 第2章 体外BTB细胞模型的建立及评价 | 第21-27页 |
| 2.1 体外BTB细胞模型的建立 | 第21-27页 |
| 2.1.1 仪器与材料 | 第21页 |
| 2.1.2 方法 | 第21-23页 |
| 2.1.3 结果 | 第23-25页 |
| 2.1.4 小结与讨论 | 第25-27页 |
| 第3章 天然冰片对BTB模型通透性的影响 | 第27-40页 |
| 3.1 天然冰片给药剂量选择 | 第27-30页 |
| 3.1.1 仪器与材料 | 第27页 |
| 3.1.2 方法 | 第27-28页 |
| 3.1.3 结果 | 第28-29页 |
| 3.1.4 小结与讨论 | 第29-30页 |
| 3.2 HRP流量测定天然冰片对BTB模型通透·性的影响 | 第30-32页 |
| 3.2.1 仪器与材料 | 第30页 |
| 3.2.2 方法 | 第30-31页 |
| 3.2.3 结果 | 第31页 |
| 3.2.4 小结与讨论 | 第31-32页 |
| 3.3 跨细胞阻值测定天然冰片对体外BTB模型通透性的影响 | 第32-34页 |
| 3.3.1 试剂与仪器 | 第32页 |
| 3.3.2 方法 | 第32-33页 |
| 3.3.3 结果 | 第33-34页 |
| 3.3.4 小结与讨论 | 第34页 |
| 3.4 Western blot测定天然冰片对BTB模型上MAPKs信号通路相关激酶表达的影响 | 第34-40页 |
| 3.4.1 试剂与仪器 | 第34-35页 |
| 3.4.2 方法 | 第35页 |
| 3.4.3 结果 | 第35-38页 |
| 3.4.4 小结与讨论 | 第38-40页 |
| 第4章 冰片通过MAPKs/ERK信号通路调节BTB模型通透性的作用和机制 | 第40-57页 |
| 4.1 跨内皮电阻确立U0126(ERK特异抑制剂)的作用时间与浓度 | 第40-41页 |
| 4.1.1 仪器与材料 | 第40页 |
| 4.1.2 方法 | 第40-41页 |
| 4.1.3 结果 | 第41页 |
| 4.1.4 小结讨论 | 第41页 |
| 4.2 HRP流量确立U0126的作用时间与浓度 | 第41-43页 |
| 4.2.1 仪器与材料 | 第41-42页 |
| 4.2.2 方法 | 第42页 |
| 4.2.3 结果 | 第42-43页 |
| 4.2.4 小结与讨论 | 第43页 |
| 4.3 跨细胞电阻检测冰片与U0126合用对BTB模型通透性的影响 | 第43-45页 |
| 4.3.1 仪器与材料 | 第43页 |
| 4.3.2 方法 | 第43-44页 |
| 4.3.3 结果 | 第44-45页 |
| 4.3.4 小结与讨论 | 第45页 |
| 4.4 HRP流量检测冰片与U0126合用对BTB模型通透性的影响 | 第45-48页 |
| 4.4.1 仪器与材料 | 第45-46页 |
| 4.4.2 方法 | 第46页 |
| 4.4.3 结果 | 第46-47页 |
| 4.4.4 小结与讨论 | 第47-48页 |
| 4.5 Western blot检测冰片与U0126合用对ERK、p-ERK以及紧密连接相关蛋白表达的影响 | 第48-51页 |
| 4.5.1 试剂与仪器 | 第48页 |
| 4.5.2 方法 | 第48-49页 |
| 4.5.3 结果 | 第49-51页 |
| 4.5.4 小结与讨论 | 第51页 |
| 4.6 Real Time-PCR检测冰片与U0126合用对紧密连接相关基因表达的影响 | 第51-57页 |
| 4.6.1 试剂与仪器 | 第51-52页 |
| 4.6.2 方法 | 第52-54页 |
| 4.6.3 结果 | 第54-56页 |
| 4.6.4 小结与讨论 | 第56-57页 |
| 第5章 RAF/MRK/ERK/MAPKs信号通路在天然冰片调节BTB通透性中的作用 | 第57-77页 |
| 5.1 Western blot检测天然冰片对Raf1和p-Raf1表达的影响 | 第57-60页 |
| 5.1.1 试剂与仪器 | 第57页 |
| 5.1.2 方法 | 第57-58页 |
| 5.1.3 结果 | 第58-59页 |
| 5.1.4 小结与讨论 | 第59-60页 |
| 5.2 跨细胞电阻确立Sorafenib Tosylate(ST)的作用时间与浓度 | 第60-61页 |
| 5.2.1 仪器与材料 | 第60页 |
| 5.2.2 方法 | 第60-61页 |
| 5.2.3 结果 | 第61页 |
| 5.2.4 小结与讨论 | 第61页 |
| 5.3 HRP流量确立Sorafenib Tosylate(ST)的作用时间与浓度 | 第61-63页 |
| 5.3.1 仪器与材料 | 第61-62页 |
| 5.3.2 方法 | 第62页 |
| 5.3.3 结果 | 第62-63页 |
| 5.3.4 小结与讨论 | 第63页 |
| 5.4 跨细胞电阻检测冰片与ST合用对BTB模型通透性的影响 | 第63-65页 |
| 5.4.1 仪器与材料 | 第63-64页 |
| 5.4.2 方法 | 第64页 |
| 5.4.3 结果 | 第64-65页 |
| 5.4.4 小结与讨论 | 第65页 |
| 5.5 HRP流量检测冰片与ST合用对BTB模型通透性的影响 | 第65-68页 |
| 5.5.1 仪器与材料 | 第65-66页 |
| 5.5.2 方法 | 第66页 |
| 5.5.3 结果 | 第66-67页 |
| 5.5.4 小结与讨论 | 第67-68页 |
| 5.6 Western blot检测冰片与ST合用对Raf1、p-Raf1以及紧密连接相关蛋白表达的影响 | 第68-71页 |
| 5.6.1 材料与仪器 | 第68页 |
| 5.6.2 方法 | 第68-69页 |
| 5.6.3 结果 | 第69-71页 |
| 5.6.4 小结与讨论 | 第71页 |
| 5.7 Real Time-PCR检测冰片与ST合用对Z0-1、F-actin和Claudin-5基因表达的影响 | 第71-77页 |
| 5.7.1 试剂与仪器 | 第71-72页 |
| 5.7.2 方法 | 第72-74页 |
| 5.7.3 结果 | 第74-76页 |
| 5.7.4 小结与讨论 | 第76-77页 |
| 结语 | 第77-79页 |
| 参考文献 | 第79-83页 |
| 附录 | 第83-87页 |
| 附录Ⅰ 缩略语中英文说明 | 第83-84页 |
| 附录Ⅱ 在研期间发表的论文 | 第84-85页 |
| 附录Ⅲ 补充数据 | 第85-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 附件 | 第88页 |
