摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-7页 |
一、绪论 | 第11-13页 |
二、材料和方法 | 第13-40页 |
2.1 材料 | 第13-24页 |
2.1.1 实验动物 | 第14页 |
2.1.2 主要实验仪器 | 第14-15页 |
2.1.3 主要药品及试剂 | 第15-17页 |
2.1.4 相关主要溶液的配制 | 第17-24页 |
2.2 试验方法 | 第24-40页 |
2.2.1 大鼠NPMSCs分离体外扩增培养 | 第24-26页 |
2.2.2 对P1代NPMSCs进行不同传代接种密度处理 | 第26页 |
2.2.3 各组NPMSCs集落形成率试验 | 第26-27页 |
2.2.4 各组NPMSCs Transwell迁移试验 | 第27页 |
2.2.5 各组NPMSCs CCK-8 (Cell Counting Kit-8)增殖试验 | 第27-28页 |
2.2.6 各组NPMSCs细胞周期分布检测 | 第28-29页 |
2.2.7 各组NPMSCs多系诱导分化潜能检测 | 第29-32页 |
2.2.8 大鼠NPMSCs多系诱导分化能力半定量分析 | 第32-36页 |
2.2.9 实时荧光定量聚合酶链式反应 | 第36-39页 |
2.2.10 各组NPMSCs细胞免疫表型的检测 | 第39-40页 |
2.3 统计学分析 | 第40页 |
三、研究结果 | 第40-60页 |
3.1 三组NPMSCs细胞形态学改变 | 第40-44页 |
3.2 低密度组和中密度组NPMSCs集落形成能力获得提高 | 第44-45页 |
3.3 低密度处理提高NPMSCs细胞迁移能力 | 第45-47页 |
3.4 三组NPMSCs CCK-8细胞增殖试验比较 | 第47-48页 |
3.5 三组NPMSCs细胞周期分布情况 | 第48-50页 |
3.6 三组NPMSCs多系分化潜能分析 | 第50-57页 |
3.6.1 三组NPMSCs体外成骨诱导分化分析 | 第50-52页 |
3.6.2 三组NPMSCs体外成脂诱导分化分析 | 第52-54页 |
3.6.3 三组NPMSCs体外成软骨诱导分化分析 | 第54-57页 |
3.7 三组NPMSCs干性基因相对表达量分析 | 第57-58页 |
3.8 各组NPMSCs细胞免疫表型结果 | 第58-60页 |
四、讨论 | 第60-64页 |
五、结论 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-71页 |
中英文对照缩略词表 | 第71-72页 |
攻读学位期间成果 | 第72-74页 |
致谢 | 第74-76页 |