中文摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-12页 |
前言 | 第13-14页 |
1 综述 | 第14-25页 |
1.1 ADV的生物学特性 | 第14-15页 |
1.1.1 ADV的分类地位 | 第14页 |
1.1.2 ADV的形态特征 | 第14页 |
1.1.3 ADV的理化特性 | 第14-15页 |
1.1.4 ADV的培养特性 | 第15页 |
1.2 ADV的分子生物学研究 | 第15-18页 |
1.2.1 ADV的基因组特点 | 第15-16页 |
1.2.2 ADV基因的复制和转录 | 第16页 |
1.2.3 ADV编码的蛋白 | 第16-18页 |
1.3 水貂阿留申病的研究 | 第18-21页 |
1.3.1 AD的流行病学 | 第18-19页 |
1.3.2 AD的发病机理 | 第19-20页 |
1.3.3 AD的临床症状 | 第20页 |
1.3.4 AD的病理变化 | 第20-21页 |
1.4 AD的诊断 | 第21-23页 |
1.4.1 病原学诊断 | 第21页 |
1.4.2 血清学诊断 | 第21-22页 |
1.4.3 分子生物学诊断 | 第22-23页 |
1.5 AD的综合防治 | 第23-24页 |
1.6 本研究的目的及意义 | 第24-25页 |
2 材料与方法 | 第25-42页 |
2.1 材料 | 第25-27页 |
2.1.1 病料 | 第25页 |
2.1.2 主要试剂 | 第25页 |
2.1.3 主要仪器 | 第25页 |
2.1.4 质粒与菌种 | 第25-26页 |
2.1.5 试剂的配制 | 第26-27页 |
2.2 方法 | 第27-42页 |
2.2.1 水貂阿留申病毒的分离鉴定 | 第27-30页 |
2.2.2 山东地区水貂阿留申病毒分子生物学特性的研究 | 第30-35页 |
2.2.3 间接ELISA检测方法的建立 | 第35-42页 |
3 结果 | 第42-54页 |
3.1 水貂阿留申病毒的分离鉴定结果 | 第42-44页 |
3.1.1 PCR初步检测结果 | 第42-43页 |
3.1.2 ADV的分离结果 | 第43页 |
3.1.3 ADV分离的PCR鉴定结果 | 第43-44页 |
3.1.4 序列的核苷酸同源性比较 | 第44页 |
3.2 山东地区水貂阿留申病毒分子生物学特性的研究结果 | 第44-47页 |
3.2.1 PCR扩增结果 | 第44-45页 |
3.2.2 酶切鉴定结果 | 第45-46页 |
3.2.3 同源性分析与系统发育分析结果 | 第46-47页 |
3.3 间接ELISA检测方法的建立结果 | 第47-54页 |
3.3.1 重组载体pMD18-T-VP2的PCR鉴定结果 | 第47页 |
3.3.2 重组载体pMD18-T-VP2的酶切鉴定结果 | 第47-48页 |
3.3.3 重组表达载体pET-32a-VP2的PCR鉴定结果 | 第48页 |
3.3.4 重组表达载体pET-32a-VP2的酶切鉴定结果 | 第48-49页 |
3.3.5 重组质粒pET-32a-VP2的序列测定结果 | 第49页 |
3.3.6 表达蛋白的SDS-PAGE电泳结果 | 第49页 |
3.3.7 表达蛋白的Western blot检测结果 | 第49-50页 |
3.3.8 纯化蛋白的SDS-PAGE电泳结果 | 第50页 |
3.3.9 抗原包被浓度和一抗稀释度的确定 | 第50-51页 |
3.3.10 抗原包被条件的确定 | 第51页 |
3.3.11 封闭液的确定 | 第51-52页 |
3.3.12 封闭液作用时间的确定 | 第52页 |
3.3.13 二抗最佳稀释度的确定 | 第52页 |
3.3.14 底物最佳作用时间的确定 | 第52-53页 |
3.3.15 临界值的确定 | 第53页 |
3.3.16 特异性检测结果 | 第53页 |
3.3.17 敏感性检测结果 | 第53页 |
3.3.18 重复性检测结果 | 第53页 |
3.3.19 临床样本检测结果 | 第53-54页 |
4 讨论 | 第54-59页 |
4.1 水貂阿留申病毒的分离鉴定 | 第54-55页 |
4.2 山东地区水貂阿留申病毒分子生物学特性的研究 | 第55-57页 |
4.3 间接ELISA检测方法的建立 | 第57-59页 |
5 结论 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-68页 |
攻读学位期间发表论文情况 | 第68-69页 |
致谢 | 第69页 |