| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-20页 |
| 1.1 课题研究背景 | 第11-17页 |
| 1.1.1 大组织高分辨率三维成像的挑战 | 第11-12页 |
| 1.1.2 生物组织透明技术概述 | 第12-14页 |
| 1.1.3 CLARITY技术概述 | 第14-17页 |
| 1.1.3.1 CLARITY技术原理 | 第14-16页 |
| 1.1.3.2 CLARITY技术的发展 | 第16页 |
| 1.1.3.3 CLARITY技术的应用 | 第16-17页 |
| 1.2 颞叶癫痫概述 | 第17-19页 |
| 1.3 研究意义及目的 | 第19页 |
| 1.4 研究内容 | 第19-20页 |
| 第二章 CLARITY技术实验及条件优化 | 第20-36页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 实验材料 | 第20-24页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第20-21页 |
| 2.2.3 实验仪器和设备 | 第21页 |
| 2.2.4 主要溶液配制 | 第21-24页 |
| 2.3 实验方法 | 第24-28页 |
| 2.3.1 CLARITY技术及其实验条件的摸索与优化 | 第24-25页 |
| 2.3.1.1 心脏灌注取脑及水凝胶成分摸索优化实验 | 第24页 |
| 2.3.1.2 电泳条件的摸索优化 | 第24-25页 |
| 2.3.1.3 光折射率匹配溶液的优化 | 第25页 |
| 2.3.2 透明度、膨胀率及BCA法测蛋白损失统计分析 | 第25-27页 |
| 2.3.2.1 紫外分光光度计法检测组织透明度 | 第25页 |
| 2.3.2.2 透明脑膨胀率的测定 | 第25-26页 |
| 2.3.2.3 BCA法测电泳过程蛋白损失率 | 第26-27页 |
| 2.3.2.4 统计分析 | 第27页 |
| 2.3.3 免疫组织化学染色及共聚焦三维成像 | 第27-28页 |
| 2.3.3.1 免疫组织化学染色 | 第27页 |
| 2.3.3.2 双光子共聚焦三维成像 | 第27-28页 |
| 2.4 实验结果 | 第28-33页 |
| 2.4.1 CLARITY技术及其实验条件的摸索与优化 | 第28-31页 |
| 2.4.1.1 电泳装置及水浴循环系统的构建 | 第28页 |
| 2.4.1.2 电泳温度及水凝胶配比的优化 | 第28-30页 |
| 2.4.1.3 光折射率匹配溶液的优化 | 第30-31页 |
| 2.4.2 BCA法测蛋白损失量测定 | 第31-32页 |
| 2.4.3 免疫组织化学染色及共聚焦三维成像 | 第32-33页 |
| 2.5 讨论 | 第33-35页 |
| 2.6 本章小结 | 第35-36页 |
| 第三章 CLARITY技术应用于颞叶癫痫模型鼠的初步研究 | 第36-46页 |
| 3.1 引言 | 第36页 |
| 3.2 实验材料 | 第36-38页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第36页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第36-37页 |
| 3.2.3 实验仪器和设备 | 第37页 |
| 3.2.4 主要溶液配制 | 第37-38页 |
| 3.3 实验方法 | 第38-40页 |
| 3.3.1 锂-匹鲁卡品癫痫造模 | 第38-39页 |
| 3.3.2 Timm染色实验 | 第39-40页 |
| 3.3.3 免疫染色及成像 | 第40页 |
| 3.4 实验结果 | 第40-44页 |
| 3.4.1 颞叶癫痫小鼠模型的构建及检测 | 第40-41页 |
| 3.4.1.1 锂-匹鲁卡品颞叶癫痫小鼠行为检测 | 第40页 |
| 3.4.1.2 Timm染色观察颞叶癫痫海马齿状回苔藓出芽（MFS） | 第40-41页 |
| 3.4.2 免疫染色及成像 | 第41-44页 |
| 3.4.2.1 普通切片免疫染色及成像 | 第41-43页 |
| 3.4.2.2 透明脑切片免疫染色及三维成像 | 第43-44页 |
| 3.5 讨论 | 第44-45页 |
| 3.6 本章小结 | 第45-46页 |
| 第四章 全文总结及展望 | 第46-49页 |
| 4.1 总结 | 第46-47页 |
| 4.2 展望 | 第47-49页 |
| 4.2.1 CLARITY技术应用于颞叶癫痫的全脑成像 | 第47页 |
| 4.2.2 针对磷酸化Tau蛋白开展药物干预实验 | 第47-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-54页 |
| 相关研究成果 | 第54-55页 |
