| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 文献综述 | 第13-25页 |
| 第一章 大脑皮层发育 | 第13-18页 |
| 1.1 大脑皮层结构 | 第13页 |
| 1.2 神经元迁移 | 第13-16页 |
| 1.3 神经元由多极形态变为双极形态 | 第16-17页 |
| 1.4 子宫内电击转染技术 | 第17-18页 |
| 第二章 LIMK信号通路及研究进展 | 第18-25页 |
| 2.1 LIMK1蛋白结构与功能 | 第18-19页 |
| 2.2 活性与调节 | 第19-21页 |
| 2.3 LIMK与神经系统发育 | 第21-23页 |
| 2.4 突触可塑性 | 第23-24页 |
| 2.5 LIMK1与威廉姆斯综合征 | 第24-25页 |
| 实验研究 | 第25-61页 |
| 第三章 LIMK1超表达载体对神经元迁移的影响 | 第25-40页 |
| 3.1 材料与方法 | 第25-33页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第25页 |
| 3.1.2 材料和试剂 | 第25页 |
| 3.1.3 limk1基因克隆质粒pGEM-LIMK1-T载体的构建 | 第25-29页 |
| 3.1.4 LIMK1超表达载体的构建 | 第29-30页 |
| 3.1.5 3T3细胞培养及转染 | 第30页 |
| 3.1.6 细胞免疫荧光染色 | 第30页 |
| 3.1.7 子宫内电击转染技术 | 第30-32页 |
| 3.1.8 取材及组织切片 | 第32页 |
| 3.1.9 组织免疫荧光染色 | 第32页 |
| 3.1.10 统计学分析 | 第32-33页 |
| 3.2 结果 | 第33-37页 |
| 3.2.1 LIMK1基因的克隆与真核表达载体的构建 | 第33-34页 |
| 3.2.2 pCAG-LIMK1-GFP真核表达载体荧光表达情况 | 第34页 |
| 3.2.2 LIMK1对神经元迁移的影响 | 第34-36页 |
| 3.2.3 LIMK1对神经元形态的影响 | 第36-37页 |
| 3.3 讨论 | 第37-38页 |
| 3.4 小结 | 第38-40页 |
| 第四章 LIMK1失活型突变体LIMK1-DN对小鼠大脑神经元迁移的影响 | 第40-47页 |
| 4.1 材料方法 | 第40-41页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第40页 |
| 4.1.2 实验材料及试剂 | 第40页 |
| 4.1.3 LIMK1-D460N表达载体的构建 | 第40页 |
| 4.1.4 细胞转染 | 第40-41页 |
| 4.1.5 细胞免疫荧光染色 | 第41页 |
| 4.1.6 子宫内电击转染 | 第41页 |
| 4.1.7 取材与组织切片 | 第41页 |
| 4.1.8 免疫荧光染色 | 第41页 |
| 4.1.9 统计学分析 | 第41页 |
| 4.2 结果 | 第41-45页 |
| 4.2.1 LIMK1失活型载体LIMK1-DN表达载体的构建 | 第41-42页 |
| 4.2.2 LIMK1-DN在 3T3细胞中表达情况 | 第42-43页 |
| 4.2.3 LIMK1-DN对神经元迁移的影响 | 第43-44页 |
| 4.2.4 LIMK1-DN对神经元形态的影响 | 第44-45页 |
| 4.3 讨论 | 第45-46页 |
| 4.4 小结 | 第46-47页 |
| 第五章 LIMK1持续激活型表达载体在大脑皮层发育中的影响 | 第47-54页 |
| 5.1 材料方法 | 第47-48页 |
| 5.1.1 实验动物 | 第47页 |
| 5.1.2 实验材料及试剂 | 第47页 |
| 5.1.3 LIMK1-CA表达载体的构建 | 第47页 |
| 5.1.4 细胞转染 | 第47-48页 |
| 5.1.5 细胞免疫荧光染色 | 第48页 |
| 5.1.6 子宫内电击转染 | 第48页 |
| 5.1.7 取材与组织切片 | 第48页 |
| 5.1.8 免疫荧光染色 | 第48页 |
| 5.1.9 统计学分析 | 第48页 |
| 5.2 结果 | 第48-52页 |
| 5.2.1 LIMK1持续激活型载体LIMK1-CA表达载体的构建 | 第48-49页 |
| 5.2.2 LIMK1-CA在 3T3细胞中表达情况 | 第49-50页 |
| 5.2.3 LIMK1-CA对神经元迁移的影响 | 第50-51页 |
| 5.2.4 LIMK1-CA对神经元形态的影响 | 第51-52页 |
| 5.3 讨论 | 第52-53页 |
| 5.4 小结 | 第53-54页 |
| 第六章 Cofilin持续激活型表达载体可以挽救LIMK1激活型载体导致的大脑皮层发育异常 | 第54-61页 |
| 6.1 材料方法 | 第54-55页 |
| 6.1.1 实验动物 | 第54页 |
| 6.1.2 实验材料及试剂 | 第54页 |
| 6.1.3 Cofilin-S3A表达载体的构建 | 第54页 |
| 6.1.4 细胞转染 | 第54-55页 |
| 6.1.5 细胞免疫荧光染色 | 第55页 |
| 6.1.6 子宫内电击转染 | 第55页 |
| 6.1.7 取材与组织切片 | 第55页 |
| 6.1.8 免疫荧光染色 | 第55页 |
| 6.1.9 统计学分析 | 第55页 |
| 6.2 结果 | 第55-58页 |
| 6.2.1 Cofilin-S3A表达载体的构建 | 第55-56页 |
| 6.2.2 Cofilin-S3A挽救了LIMK1-CA导致的神经元迁移障碍 | 第56-57页 |
| 6.2.3 Cofilin-S3A挽救了LIMK1-CA导致的神经元形态异常 | 第57-58页 |
| 6.3 讨论 | 第58-59页 |
| 6.4 小结 | 第59-61页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 作者简介 | 第69-70页 |
