| 摘要 | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第7-18页 |
| 1 研究背景及意义 | 第7-9页 |
| 1.1 研究背景 | 第7-8页 |
| 1.1.1 肉鸡养殖与生产 | 第7页 |
| 1.1.2 肉鸡福利与食品安全 | 第7-8页 |
| 1.2 研究目的及意义 | 第8-9页 |
| 2 肉鸡腹水综合征概述 | 第9-14页 |
| 2.1 发病机理 | 第9-10页 |
| 2.2 临床特征和病理变化 | 第10-11页 |
| 2.3 致病因素 | 第11-13页 |
| 2.3.1 遗传与选育 | 第11页 |
| 2.3.2 环境因素 | 第11-12页 |
| 2.3.3 管理 | 第12-13页 |
| 2.4 管理与防治 | 第13-14页 |
| 2.4.1 模式正规化 | 第13页 |
| 2.4.2 品种抗性化 | 第13页 |
| 2.4.3 膳食合理化 | 第13页 |
| 2.4.4 其他 | 第13-14页 |
| 3 心肌能量代谢的作用机制 | 第14-18页 |
| 3.1 正常右心室的能量代谢 | 第14页 |
| 3.2 腹水右心室的能量代谢 | 第14-15页 |
| 3.3 糖代谢转化与右心肥厚 | 第15-16页 |
| 3.4 心肌糖酵解的作用机制 | 第16-18页 |
| 3.4.1 糖酵解概述 | 第16页 |
| 3.4.2 糖酵解的限速因子 | 第16-18页 |
| 第二章 试验研究 | 第18-36页 |
| 试验一 腹水综合征肉鸡心肌组织的形态变化 | 第18-21页 |
| 1 试验材料 | 第18页 |
| 1.1 试验原料 | 第18页 |
| 1.2 主要设备 | 第18页 |
| 1.3 主要试剂 | 第18页 |
| 2 试验方法 | 第18-20页 |
| 2.1 Bouins固定液的配制 | 第19页 |
| 2.2 载玻片和盖玻片的处理 | 第19页 |
| 2.3 石蜡切片的制作 | 第19-20页 |
| 3 试验结果与分析 | 第20-21页 |
| 试验二 糖酵解调控基因PFK和PKM在腹水综合征肉鸡心肌组织中的表达差异 | 第21-28页 |
| 1 试验材料 | 第21页 |
| 1.1 试验原料 | 第21页 |
| 1.2 主要设备 | 第21页 |
| 1.3 主要试剂 | 第21页 |
| 2 试验方法 | 第21-24页 |
| 2.1 心肌组织的前处理 | 第21-22页 |
| 2.2 心肌组织RNA提取 | 第22页 |
| 2.3 RNA浓度的测定以及质量检验 | 第22页 |
| 2.4 RT-qPCR | 第22-24页 |
| 2.4.1 第一链cDNA的合成以及gDNA的去除 | 第22-23页 |
| 2.4.2 引物设计 | 第23页 |
| 2.4.3 引物扩増及最佳Tm试验 | 第23-24页 |
| 2.4.4 RT-qPCR反应体系的建立 | 第24页 |
| 3 试验结果与分析 | 第24-28页 |
| 3.1 引物扩增及最佳退火温度试验 | 第24-25页 |
| 3.2 目的基因、内参基因的扩增曲线 | 第25-27页 |
| 3.3 基因表达差异的显著性分析 | 第27-28页 |
| 试验三 糖酵解调控蛋白PFK1、p-PFK2和PKM2在腹水综合征肉鸡心肌组织中的表达差异 | 第28-36页 |
| 1 试验材料 | 第28-29页 |
| 1.1 试验原料 | 第28页 |
| 1.2 主要设备 | 第28-29页 |
| 1.3 主要试剂 | 第29页 |
| 2 试验方法 | 第29-32页 |
| 2.1 免疫组织化学法 | 第29-30页 |
| 2.2 蛋白免疫印迹法 | 第30-32页 |
| 2.2.1 心肌组织样品的采取 | 第30页 |
| 2.2.2 心肌样品蛋白的提取 | 第30-32页 |
| 3 试验结果与分析 | 第32-36页 |
| 3.1 目的蛋白PFK1、p-PFK2和PKM2在心肌组织中的定位 | 第32-33页 |
| 3.2 目的蛋白PFK1、p-PFK2和PKM2在心肌组织中的表达差异 | 第33-36页 |
| 第三章 讨论 | 第36-39页 |
| 第四章 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-44页 |
| Abstract | 第44页 |
| 致谢 | 第46页 |
