| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-12页 |
| 图表清单 | 第12-14页 |
| 缩略词 | 第14-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-31页 |
| ·生物剂量计 | 第15-23页 |
| ·生物剂量计的应用范围 | 第15页 |
| ·生物剂量计特征和分类 | 第15-23页 |
| ·染色体畸变分析方法 | 第16-18页 |
| ·FISH 易位分析方法 | 第18-19页 |
| ·PCC 分析方法 | 第19页 |
| ·MN 分析方法 | 第19-20页 |
| ·GPA 基因位点突变分析方法 | 第20-21页 |
| ·GADD45 基因位点突变分析方法 | 第21-22页 |
| ·mtDNA 缺失分析方法 | 第22-23页 |
| ·表面等离激元共振（Surface plasmon resonance,SPR）生物传感技术 | 第23-28页 |
| ·SPR 传感器 | 第24页 |
| ·SPR 生物传感技术研究现状 | 第24-27页 |
| ·蛋白质与蛋白质之间相互作用的研究 | 第25页 |
| ·DNA 与蛋白质之间相互作用的研究 | 第25-26页 |
| ·DNA 与 DNA 之间相互作用的研究 | 第26页 |
| ·制药业中的应用 | 第26页 |
| ·蛋白质与多肽、糖类分子和脂类分子间相互作用的研究 | 第26页 |
| ·生物体系的纯化与筛选 | 第26-27页 |
| ·SPR 生物传感技术发展趋势 | 第27-28页 |
| ·进一步提高 SPR 检测灵敏度 | 第27-28页 |
| ·进一步提高 SPR 检测特异性 | 第28页 |
| ·本文的选题背景及研究内容 | 第28-31页 |
| 第二章 基于 SPR 技术的 HPRT 生物剂量体系研究 | 第31-55页 |
| ·引言 | 第31-33页 |
| ·Hprt 基因位点突变检测方法学 | 第31-33页 |
| ·放射自显影法 | 第32页 |
| ·5-溴脱氧尿嘧啶法 | 第32页 |
| ·多核细胞检测法 | 第32页 |
| ·细胞克隆检测法 | 第32-33页 |
| ·实验材料与方法 | 第33-41页 |
| ·实验材料 | 第33-36页 |
| ·主要实验仪器 | 第33-34页 |
| ·主要实验试剂 | 第34-35页 |
| ·溶液配制 | 第35-36页 |
| ·实验方法 | 第36-41页 |
| ·小鼠γ射线辐照 | 第36页 |
| ·淋巴细胞提取 | 第36-37页 |
| ·淋巴细胞裂解 | 第37页 |
| ·BI2000 SPR 生物传感谱仪 | 第37-38页 |
| ·金膜表面修饰和 HPRT 的检测 | 第38-39页 |
| ·蛋白质印迹检测法 | 第39-40页 |
| ·多核细胞检测 hprt 基因突变 | 第40-41页 |
| ·统计方法 | 第41页 |
| ·结果与讨论 | 第41-54页 |
| ·高灵敏度检测 HPRT 的 SPR 方法 | 第41-47页 |
| ·6-硫代鸟嘌呤/HPRT/抗 HPRT 抗体夹心结构检测 HPRT 分子 | 第41-44页 |
| ·HPRT 敏感金膜的再生 | 第44-46页 |
| ·6-硫代鸟嘌呤/HPRT/抗 HPRT 抗体夹心结构检测 HPRT 分子的灵敏度 | 第46-47页 |
| ·基于 SPR 方法的 HPRT 生物剂量体系 | 第47-51页 |
| ·蛋白质印迹法检测小鼠淋巴细胞裂解液中 HPRT 分子 | 第47-48页 |
| ·辐照小鼠淋巴细胞 HPRT 的剂量效应关系 | 第48-50页 |
| ·基于 HPRT 的剂量效应关系的辐照小鼠剂量重建 | 第50-51页 |
| ·多核细胞法 hprt 基因突变生物剂量体系 | 第51-53页 |
| ·辐照小鼠 hprt 体基因突变频率的剂量效应关系 | 第51-52页 |
| ·基于 hprt 基因突变频率剂量效应关系的辐照小鼠剂量重建 | 第52-53页 |
| ·HPRT 生物剂量体系与 hprt 体基因突变生物剂量体系的比较 | 第53-54页 |
| ·小结 | 第54-55页 |
| 第三章 基于 SPR 技术的 DNA 断裂生物剂量体系研究 | 第55-71页 |
| ·引言 | 第55-58页 |
| ·SCGE | 第56-57页 |
| ·SCGE 检测 DNA 断裂原理 | 第56页 |
| ·基于 SCGE 生物剂量计的研究 | 第56-57页 |
| ·γ-H2AX | 第57-58页 |
| ·γ-H2AX 的形成 | 第57页 |
| ·基于γ-H2AX 生物剂量计的研究 | 第57-58页 |
| ·实验材料与方法 | 第58-63页 |
| ·实验材料 | 第58-61页 |
| ·主要实验仪器 | 第58-59页 |
| ·主要实验试剂 | 第59-60页 |
| ·溶液配制 | 第60-61页 |
| ·实验方法 | 第61-63页 |
| ·小鼠淋巴细胞提取及培养 | 第61页 |
| ·淋巴细胞γ射线辐照 | 第61页 |
| ·淋巴细胞 DNA 提取 | 第61页 |
| ·DNA 断裂的 SPR 检测 | 第61页 |
| ·中性 SCGE | 第61-62页 |
| ·统计方法 | 第62-63页 |
| ·结果与讨论 | 第63-70页 |
| ·基于 SPR 方法的 DNA 断片生物剂量体系 | 第63-67页 |
| ·SPR 检测小牛胸腺 DNA 断片 | 第63-64页 |
| ·γ射线辐照的淋巴细胞 DNA 断片剂量效应关系 | 第64-66页 |
| ·基于 DNA 断片（SPR 方法）剂量效应关系的辐照小鼠剂量重建 | 第66-67页 |
| ·基于中性 SCGE 法 DNA 断裂的生物剂量体系 | 第67-69页 |
| ·DNA 断裂（中性 SCGE 技术）剂量效应关系 | 第67-68页 |
| ·基于 DNA 断裂（中性 SCGE 技术）剂量效应关系的小鼠剂量重建 | 第68-69页 |
| ·基于 SPR 和 SCGE 技术的两种 DNA 断裂生物剂量体系的比较 | 第69-70页 |
| ·小结 | 第70-71页 |
| 第四章 基于 SPR 技术的神经酰胺生物剂量体系研究 | 第71-88页 |
| ·引言 | 第71-73页 |
| ·神经酰胺检测方法 | 第72-73页 |
| ·高效液相色谱法 | 第72页 |
| ·薄层色谱法 | 第72页 |
| ·离子火焰检测法 | 第72页 |
| ·大肠杆菌二酰甘油激酶法 | 第72-73页 |
| ·实验材料与方法 | 第73-77页 |
| ·实验材料 | 第73-75页 |
| ·主要实验仪器 | 第73-74页 |
| ·主要实验试剂 | 第74页 |
| ·溶液配制 | 第74-75页 |
| ·实验方法 | 第75-77页 |
| ·小鼠γ射线辐照 | 第75页 |
| ·小鼠尿液收集和处理 | 第75页 |
| ·神经酰胺的扩增检测 | 第75页 |
| ·统计方法 | 第75-77页 |
| ·结果与讨论 | 第77-87页 |
| ·尿液神经酰胺存在的确定 | 第77-79页 |
| ·样品处理的优化 | 第79-82页 |
| ·神经酰胺敏感金膜的再生 | 第82-84页 |
| ·辐照小鼠尿液神经酰胺剂量效应关系 | 第84-86页 |
| ·基于神经酰胺剂量效应关系的辐照小鼠剂量重建 | 第86-87页 |
| ·小结 | 第87-88页 |
| 第五章 结论与展望 | 第88-90页 |
| ·结论 | 第88-89页 |
| ·本论文的创新点 | 第89页 |
| ·研究展望 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-103页 |
| 致谢 | 第103-104页 |
| 在学期间的研究成果及发表的学术论文 | 第104-105页 |
| 攻读博士学位期间发表（录用）论文情况 | 第104-105页 |
| 攻读博士学位期间参加科研项目情况 | 第105页 |
