| 致谢 | 第1-5页 |
| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-41页 |
| ·鱼类对温度的感知和适应 | 第16-21页 |
| ·鱼类的温度感受器 | 第16-18页 |
| ·鱼类的体温 | 第18-19页 |
| ·鱼类对温度适应范围的研究进展 | 第19-21页 |
| ·鱼类对温度升高的响应的研究进展 | 第21-37页 |
| ·温度升高对鱼类存活率的影响 | 第21-22页 |
| ·温度升高对鱼类行为学的影响 | 第22-23页 |
| ·温度升高对鱼类组织结构的影响 | 第23-26页 |
| ·温度升高对鱼类氧化应激反应的影响 | 第26-30页 |
| ·温度升高对鱼类自身免疫反应的影响 | 第30-31页 |
| ·温度升高对鱼类能量支出的影响 | 第31-32页 |
| ·热休克蛋白 70 的研究进展 | 第32-37页 |
| ·鱼类热致死机制的研究进展 | 第37-38页 |
| ·水产动物耐热遗传育种的研究进展 | 第38-39页 |
| ·本研究的目的及意义 | 第39-41页 |
| 第二章 褐牙鲆对高温的生态适应性观察 | 第41-65页 |
| ·研究背景 | 第41页 |
| ·材料与方法 | 第41-49页 |
| ·实验材料 | 第41-42页 |
| ·实验设计和取样 | 第42-44页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第44页 |
| ·主要仪器 | 第44页 |
| ·主要试剂 | 第44页 |
| ·不同组织的石蜡切片 | 第44-45页 |
| ·酶的相对活力测定 | 第45-46页 |
| ·组织匀浆制备 | 第45页 |
| ·总蛋白的测定 | 第45页 |
| ·超氧化物歧化酶（SOD）的测定 | 第45-46页 |
| ·谷胱甘肽（GSH）的测定 | 第46页 |
| ·溶菌酶（LZM）的测定 | 第46页 |
| ·丙酮酸激酶（PK）的测定 | 第46页 |
| ·实时荧光定量 PCR 检测 | 第46-49页 |
| ·总 RNA 提取和 cDNA 第一条链的合成 | 第46-47页 |
| ·实时荧光定量 PCR | 第47-49页 |
| ·数据统计 | 第49页 |
| ·结果 | 第49-60页 |
| ·褐牙鲆不同组织的组织学变化 | 第49-53页 |
| ·褐牙鲆各个组织中酶的相对活力变化 | 第53-56页 |
| ·褐牙鲆各个组织中 hsp70 基因表达量的变化 | 第56-60页 |
| ·褐牙鲆各个组织在 32℃下 hsp70 基因表达量的变化 | 第56-58页 |
| ·褐牙鲆在 32℃下不同时间的 hsp70 基因的组织表达差异 | 第58-60页 |
| ·讨论 | 第60-65页 |
| ·高温对褐牙鲆肝、肾和鳃的组织结构影响最显著 | 第60-61页 |
| ·高温对褐牙鲆各个组织酶相对活力的影响 | 第61-63页 |
| ·不同组织 hsp70 表达量的变化 | 第63-64页 |
| ·鳃和肝是研究高温胁迫的理想组织 | 第64-65页 |
| 第三章 慢性升温对褐牙鲆、杂交鲆组织学、酶学及 hsp70 表达影响的研究 | 第65-81页 |
| ·研究背景 | 第65页 |
| ·材料与方法 | 第65-68页 |
| ·实验材料 | 第65-66页 |
| ·实验设计和取样 | 第66页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第66-67页 |
| ·鳃组织的石蜡切片 | 第67页 |
| ·酶的相对活力测定 | 第67页 |
| ·过氧化氢酶（CAT）的测定 | 第67页 |
| ·实时荧光定量 PCR 检测 | 第67页 |
| ·数据统计 | 第67-68页 |
| ·结果 | 第68-74页 |
| ·褐牙鲆、杂交鲆行为学变化及累计存活率分析 | 第68-70页 |
| ·褐牙鲆、杂交鲆鳃的组织学变化 | 第70-72页 |
| ·褐牙鲆、杂交鲆 SOD、CAT、LZM 和 PK 的变化 | 第72-73页 |
| ·褐牙鲆、杂交鲆 hsp70 基因表达量的变化 | 第73-74页 |
| ·讨论 | 第74-81页 |
| ·杂交鲆累计存活率高于褐牙鲆 | 第74-75页 |
| ·慢性升温模式下褐牙鲆的鳃组织受到严重的破坏 | 第75-77页 |
| ·慢性升温模式下褐牙鲆、杂交鲆酶的相对活力变化差异 | 第77-79页 |
| ·慢性升温对褐牙鲆和杂交鲆 hsp70 表达量的影响 | 第79-80页 |
| ·小结 | 第80-81页 |
| 第四章 急性升温对褐牙鲆、杂交鲆组织学、酶学及 hsp70 表达影响的研究 | 第81-99页 |
| ·研究背景 | 第81页 |
| ·材料与方法 | 第81-83页 |
| ·实验材料 | 第81-82页 |
| ·实验设计和取样 | 第82页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第82页 |
| ·组织切片及投射电镜观察 | 第82-83页 |
| ·透射电镜样品的处理 | 第82-83页 |
| ·酶的相对活力测定 | 第83页 |
| ·实时荧光定量 PCR 检测 | 第83页 |
| ·数据统计 | 第83页 |
| ·结果 | 第83-94页 |
| ·褐牙鲆、杂交鲆行为学变化及累计存活率分析 | 第83-86页 |
| ·褐牙鲆、杂交鲆鳃的组织学变化 | 第86-89页 |
| ·褐牙鲆、杂交鲆 SOD、GSH、LZM 和 PK 的变化 | 第89-92页 |
| ·褐牙鲆、杂交鲆 hsp70 基因表达量的变化 | 第92-94页 |
| ·讨论 | 第94-99页 |
| ·急性升温模式下褐牙鲆、杂交鲆行为学及累计存活率变化 | 第94-96页 |
| ·急性升温模式下褐牙鲆、杂交鲆鳃的结构变化 | 第96页 |
| ·急性升温模式下褐牙鲆、杂交鲆酶的相对活力变化 | 第96-97页 |
| ·急性升温模式下褐牙鲆、杂交鲆 hsp70 基因表达量变化 | 第97-98页 |
| ·小结 | 第98-99页 |
| 第五章 29℃下褐牙鲆、大西洋牙鲆和杂交鲆的相关酶活力及 hsp70/hsc70/hsp90 表达量的变化 | 第99-124页 |
| ·研究背景 | 第99-100页 |
| ·材料与方法 | 第100-108页 |
| ·实验材料 | 第100页 |
| ·实验设计和取样 | 第100页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第100-101页 |
| ·主要仪器 | 第100-101页 |
| ·主要试剂 | 第101页 |
| ·褐牙鲆、大西洋牙鲆及杂交鲆 hsp70/hsp90 基因克隆 | 第101-105页 |
| ·总 RNA 提取和 cDNA 第一条链合成 | 第101页 |
| ·hsp70/hsp90 基因部分 cDNA 序列获得 | 第101-103页 |
| ·hsp70/hsp90 基因 cDNA 全序列获得（RACE） | 第103-105页 |
| ·hsp70/hsp90 基因序列分析及进化树构建 | 第105页 |
| ·酶的相对活力测定 | 第105页 |
| ·实时荧光定量 PCR 检测 | 第105-107页 |
| ·总 RNA 提取和 cDNA 第一条链的合成 | 第105页 |
| ·实时荧光定量 PCR | 第105-107页 |
| ·数据统计 | 第107-108页 |
| ·结果 | 第108-120页 |
| ·褐牙鲆、大西洋牙鲆、杂交鲆 hsp70/hsp90 基因克隆及序列分析 | 第108-116页 |
| ·hsp70 基因克隆及序列分析 | 第108-111页 |
| ·hsp90 基因克隆及序列分析 | 第111-116页 |
| ·褐牙鲆、大西洋牙鲆及杂交鲆 SOD、GSH、LZM 和 PK 的变化 | 第116-118页 |
| ·褐牙鲆、大西洋牙鲆及杂交鲆 hsp70/hsc70/hsp90 基因表达量的变化 | 第118-120页 |
| ·讨论 | 第120-124页 |
| ·褐牙鲆、大西洋牙鲆和杂交鲆 hsp70/hsp90 基因 cDNA 序列高度保守 | 第120-121页 |
| ·29℃下褐牙鲆、大西洋牙鲆及杂交鲆酶的相对活力变化 | 第121-122页 |
| ·29℃下褐牙鲆、大西洋牙鲆及杂交鲆 hsp70/hsc70/hsp90 基因表达量变化 | 第122-123页 |
| ·小结 | 第123-124页 |
| 第六章 结论与展望 | 第124-127页 |
| ·主要研究结论 | 第124-125页 |
| ·展望 | 第125-127页 |
| 参考文献 | 第127-143页 |
| 作者简介 | 第143-144页 |
| 博士期间发表和完成的论文 | 第144页 |
