摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-14页 |
第1章 前言 | 第14-30页 |
·海藻硫酸多糖的研究进展 | 第14-19页 |
·海藻硫酸多糖的结构与性质 | 第14-16页 |
·海藻硫酸多糖的制备 | 第16-17页 |
·海藻硫酸多糖的活性 | 第17-19页 |
·抗凝血活性 | 第17-18页 |
·抗氧化活性 | 第18页 |
·抗肿瘤活性及免疫调节活性 | 第18-19页 |
·其他活性 | 第19页 |
·马尾藻多糖研究概况 | 第19-21页 |
·马尾藻的药用价值 | 第19-20页 |
·马尾藻多糖制备及活性研究 | 第20-21页 |
·草酸钙结石研究概况 | 第21-28页 |
·草酸钙结石成因 | 第21-23页 |
·草酸钙结晶的体外评价方法 | 第23-24页 |
·草酸钙结石的体内研究方法 | 第24-25页 |
·氧化应激与草酸钙结石 | 第25-28页 |
·高草酸诱致的氧化损伤 | 第25-26页 |
·活性氧与线粒体 | 第26-27页 |
·抗氧化疗法与草酸钙结石 | 第27-28页 |
·硫酸多糖防治草酸钙结石的研究概况 | 第28页 |
·本文研究目的与方案 | 第28-30页 |
·研究目的与意义 | 第28页 |
·研究方案 | 第28-30页 |
第2章 草叶马尾藻多糖的制备工艺 | 第30-45页 |
·引言 | 第30页 |
·实验仪器与材料 | 第30-31页 |
·实验方法 | 第31-33页 |
·草叶马尾藻的预处理 | 第31页 |
·热水浸提SGP | 第31页 |
·超声辅助提取SGP | 第31-32页 |
·超声辅助提取SGP工艺流程 | 第31页 |
·超声辅助提取SGP的单因素试验 | 第31页 |
·超声辅助提取SGP的正交试验设计 | 第31-32页 |
·SGP含量测定 | 第32页 |
·葡萄糖标准曲线的制备 | 第32页 |
·SGP含量测定 | 第32页 |
·SGP除蛋白工艺研究 | 第32-33页 |
·三氯乙酸法除蛋白的单因素试验 | 第32-33页 |
·三氯乙酸法除蛋白的正交试验设计 | 第33页 |
·SGP脱色工艺研究 | 第33页 |
·影响过氧化氢脱色的单因素试验 | 第33页 |
·过氧化氢脱色正交试验设计 | 第33页 |
·结果与讨论 | 第33-44页 |
·葡萄糖标准曲线回归方程建立 | 第33-34页 |
·超声辅助提取SGP工艺的研究结果与分析 | 第34-37页 |
·超声辅助提取SGP工艺的单因素研究结果与分析 | 第34-35页 |
·超声辅助提取SGP的正交试验结果与分析 | 第35-37页 |
·热水浸提与超声辅助提取SGP的比较 | 第37页 |
·三氯乙酸法除蛋白工艺的研究结果与分析 | 第37-41页 |
·三氯乙酸法除蛋白工艺的单因素研究结果与分析 | 第37-39页 |
·三氯乙酸法除蛋白的正交试验研究结果与分析 | 第39-41页 |
·SGP的脱色工艺研究结果与分析 | 第41-44页 |
·SGP的脱色工艺单因素研究结果与分析 | 第41-42页 |
·SGP的脱色工艺正交试验研究结果与分析 | 第42-44页 |
·本章小结 | 第44-45页 |
第3章 草叶马尾藻多糖的理化性质 | 第45-59页 |
·引言 | 第45页 |
·实验仪器与材料 | 第45-46页 |
·实验方法 | 第46-50页 |
·SGP的理化性质初步观测 | 第46-47页 |
·SGP的醋酸纤维素薄膜电泳分析 | 第47页 |
·SGP的分子量测定 | 第47页 |
·SGP的单糖组成分析 | 第47-48页 |
·SGP的糖醛酸含量测定 | 第48页 |
·SGP的硫酸基含量测定 | 第48-49页 |
·SGP的紫外光谱检测和蛋白含量测定 | 第49页 |
·SGP的红外光谱检测 | 第49页 |
·SGP的粒径研究 | 第49-50页 |
·结果与讨论 | 第50-58页 |
·SGP的理化性质初步观察结果 | 第50页 |
·SGP的醋酸纤维素薄膜电泳分析 | 第50页 |
·SGP的分子量测定结果及分析 | 第50-51页 |
·SGP的单糖组成测定结果及分析 | 第51-54页 |
·SGP的糖醛酸含量测定结果及分析 | 第54页 |
·SGP的硫酸基含量测定结果及分析 | 第54-55页 |
·SGP的紫外光谱分析和蛋白含量测定结果 | 第55-56页 |
·SGP的红外光谱分析 | 第56-57页 |
·SGP的粒径分析结果 | 第57-58页 |
·本章小结 | 第58-59页 |
第4章 草叶马尾藻多糖体外抗氧化活性 | 第59-65页 |
·引言 | 第59页 |
·实验仪器与材料 | 第59-60页 |
·实验方法 | 第60-61页 |
·SGP对DPPH自由基的清除 | 第60页 |
·SGP对超氧阴离子自由基的清除 | 第60-61页 |
·SGP的还原力测定 | 第61页 |
·结果与讨论 | 第61-64页 |
·SGP对DPPH自由基的清除率结果及分析 | 第61-62页 |
·SGP对超氧阴离子自由基的清除率结果及分析 | 第62-63页 |
·SGP的还原能力结果及分析 | 第63-64页 |
·本章小结 | 第64-65页 |
第5章 草叶马尾藻多糖体外抑制草酸钙结晶活性 | 第65-72页 |
·引言 | 第65页 |
·实验仪器与材料 | 第65页 |
·实验方法 | 第65-66页 |
·草酸钙结晶形成的动力学因子测定 | 第65-66页 |
·草酸钙结晶形貌测定 | 第66页 |
·草酸钙混悬液的Zeta电位测定 | 第66页 |
·结果与讨论 | 第66-71页 |
·草酸钙结晶形成的动力学因子测定结果及分析 | 第66-69页 |
·各组间tmax,SN,SA比较 | 第67-68页 |
·成核、聚集抑制率的计算 | 第68-69页 |
·草酸钙结晶形貌与粒径大小分析 | 第69-70页 |
·Zeta电位测定结果及分析 | 第70-71页 |
·本章小结 | 第71-72页 |
第6章 草叶马尾藻多糖对高草酸诱致大鼠肾损伤的保护作用研究 | 第72-95页 |
·引言 | 第72页 |
·实验仪器与材料 | 第72-74页 |
·实验动物 | 第72页 |
·仪器与材料 | 第72-74页 |
·实验方法 | 第74-82页 |
·高草酸尿症大鼠模型的建立和分组 | 第74页 |
·实验过程 | 第74页 |
·尿液检测指标及检测方法 | 第74-76页 |
·血清检测指标及检测方法 | 第76页 |
·肾脏组织切片 | 第76-79页 |
·肾脏线粒体检测指标及检测方法 | 第79-82页 |
·肾脏线粒体脂质过氧化检测 | 第79页 |
·肾脏线粒体SOD活力的检测 | 第79-80页 |
·肾脏线粒体GSH-PX活力的检测 | 第80页 |
·肾脏线粒体CAT活力的检测 | 第80-81页 |
·肾脏线粒体SDH活力的检测 | 第81页 |
·肾脏线粒体ATP酶活力的检测 | 第81-82页 |
·肾脏线粒体肿胀度的测定 | 第82页 |
·结果与讨论 | 第82-93页 |
·尿液生化检测指标结果及分析 | 第82-83页 |
·血清检测指标结果及分析 | 第83页 |
·肾脏组织切片观察结果 | 第83-84页 |
·肾脏线粒体各检测指标结果及分析 | 第84-93页 |
·肾脏线粒体脂质过氧化检测结果及分析 | 第84-85页 |
·肾脏线粒体SOD活力测结果及分析 | 第85-86页 |
·肾脏线粒体GSH-PX活力检测结果及分析 | 第86-87页 |
·肾脏线粒体CAT活力的检测结果及分析 | 第87-88页 |
·肾脏线粒体SDH活力的检测结果及分析 | 第88-89页 |
·肾脏线粒体ATP酶活力的检测结果及分析 | 第89-93页 |
·大鼠肾脏线粒体肿胀度的检测结果及分析 | 第93页 |
·本章小结 | 第93-95页 |
第7章 结论 | 第95-97页 |
本文创新点 | 第97-98页 |
参考文献 | 第98-111页 |
附录 | 第111-112页 |
致谢 | 第112-113页 |
科研工作主要成果 | 第113页 |