| 目录 | 第1-10页 |
| 致谢 | 第10-11页 |
| 缩略语表 | 第11-12页 |
| 摘要 | 第12-14页 |
| Abstract | 第14-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-45页 |
| 1.植物Fe营养的吸收 | 第17-24页 |
| ·双子叶植物和单子叶非禾本科植物 | 第17-20页 |
| ·单子叶禾本科植物 | 第20-24页 |
| 2.植物体内Fe的运输 | 第24-25页 |
| ·Fe在植物器官和组织之间的长程运输 | 第24页 |
| ·Fe在植物组织和器官中的装载 | 第24-25页 |
| 3.植物体中Fe的感应和信号调控 | 第25-32页 |
| ·转录调控 | 第25-26页 |
| ·转录后调控 | 第26-27页 |
| ·信号的长程传递 | 第27-32页 |
| 4.激素、其他信号分子在Fe缺乏响应中的作用 | 第32-36页 |
| ·Ethylene和Auxin | 第32-33页 |
| ·NO | 第33-36页 |
| 5.磷信号与Fe信号的相互作用 | 第36-37页 |
| 6.植物中Fe的吸收、代谢和氧化-还原反应之间的关系 | 第37-39页 |
| 7.水稻中Fe吸收的相关研究进展 | 第39-45页 |
| ·水稻既可以吸收Fe(Ⅲ)也可以吸收Fe(Ⅱ) | 第39-40页 |
| ·水稻中Fe吸收相关基因的表达 | 第40-45页 |
| 第二章 突变体Osnaatl的筛选、基因克隆和表型鉴定 | 第45-71页 |
| 1.材料与方法 | 第45-59页 |
| ·供试材料 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45-59页 |
| ·突变体筛选 | 第45-46页 |
| ·水稻生长条件 | 第46页 |
| ·水稻培养液配方 | 第46页 |
| ·表型描述 | 第46-48页 |
| ·照片拍摄 | 第46-47页 |
| ·植株生长与根系参数测定 | 第47页 |
| ·叶绿素含量的测定 | 第47页 |
| ·根部细胞的组织形态学观察 | 第47-48页 |
| ·大田栽培、盆栽及农艺学形状分析 | 第48页 |
| ·突变基因克隆 | 第48-57页 |
| ·突变体的F_2群体的构建及突变基因的遗传分析 | 第48页 |
| ·突变基因的克隆 | 第48-55页 |
| ·F_2群体中样品DNA的提取 | 第48-49页 |
| ·突变基因的图位克隆 | 第49-51页 |
| ·OsNAATl的RT分析 | 第51-52页 |
| ·OsNAATl原核蛋白表达分析 | 第52-55页 |
| ·突变体中OsNAATl基因的功能互补验证 | 第55-57页 |
| ·突变体和野生型中DMA的分析 | 第57-59页 |
| 2.结果与分析 | 第59-70页 |
| ·突变体的筛选和突变体的表型 | 第59-65页 |
| ·突变体的筛选 | 第59-61页 |
| ·突变体生长及根部参数变化 | 第61-62页 |
| ·突变体与野生型根部组织细胞形态变化观察 | 第62页 |
| ·不同形态的Fe对突变体的影响 | 第62-64页 |
| ·大田栽培条件下突变体农艺形状的分析 | 第64-65页 |
| ·突变体基因的克隆及相关分析 | 第65-70页 |
| ·突变体的遗传分析 | 第65-66页 |
| ·突变基因的克隆 | 第66-68页 |
| ·突变体的转基因回复验证 | 第68-69页 |
| ·突变体和野生型中DMA生物合成的变化 | 第69-70页 |
| 3.讨论 | 第70-71页 |
| 第三章 水稻中不同Fe吸收机制的相互关系 | 第71-94页 |
| 1.材料与方法 | 第71-78页 |
| ·供试材料 | 第71页 |
| ·实验方法 | 第71-78页 |
| ·ICP-MS测定Osnaatl和野生型中金属元素的含量 | 第71-72页 |
| ·半定量、定量RT-PCR分析Fe吸收、转运相关的基因表达 | 第72-73页 |
| ·水稻基因芯片分析 | 第73-76页 |
| ·野生Nipponbare中DMA分泌量分析 | 第76页 |
| ·不同Fe状态条件下,Osnaatl和野生型中NA含量的分析 | 第76-78页 |
| 2.结果与分析 | 第78-89页 |
| ·Osnaatl和野生型在不同供Fe状态下,地上部分和根中Fe及其他金属元素含量的比较 | 第78-82页 |
| ·Osnaatl和野生型在不同供Fe状态下,Fe吸收相关基因表达的比较 | 第82-85页 |
| ·野生型植株在不同Fe供应条件下,Fe吸收相关基因的表达 | 第85-87页 |
| ·野生型植株在不同Fe供应条件下,DMA生物合成的差异 | 第87-88页 |
| ·不同状态的Fe供应条件下,野生型和Osnaatl中NA含量变化的比较 | 第88-89页 |
| 3.讨论 | 第89-94页 |
| ·水稻中Strategy Ⅱ机制的缺失对Fe(Ⅱ)的吸收具有促进作用 | 第89-90页 |
| ·Fe(Ⅲ)的吸收对水稻具有特殊的生理意义 | 第90-94页 |
| 第四章 Pi缺乏对水稻Fe吸收、利用的影响 | 第94-107页 |
| 1.材料与方法 | 第94-96页 |
| ·供试材料 | 第94页 |
| ·实验方法 | 第94-96页 |
| ·野生型和突变体在加Pi和Pi缺乏营养液中生长的表型观察 | 第94页 |
| ·野生型和突变体在加Pi和Pi缺乏条件下,Fe含量测定 | 第94页 |
| ·野生型和突变体在加Pi和Pi缺乏条件下,NA含量测定 | 第94页 |
| ·野生型和突变体在加Pi和Pi缺乏条件下的芯片杂交 | 第94-95页 |
| ·芯片结果的RT-PCR验证 | 第95-96页 |
| 2.结果与分析 | 第96-104页 |
| ·Pi缺乏对突变体表型的影响 | 第96-98页 |
| ·Pi缺乏条件下,Osnaatl和野生型植株体内Fe含量的变化 | 第98-99页 |
| ·Pi缺乏处理与不同Fe状态营养液中,Osnaatl和野生型植株体内NA含量的变化 | 第99-100页 |
| ·Fe(Ⅲ)为供Fe源的营养液中,Pi缺乏处理与供Pi处理条件下,Osnaatl和野生型Fe吸收相关基因表达的比较 | 第100-104页 |
| 3.讨论 | 第104-107页 |
| 第五章 水稻Fe缺乏和Ethylene以及低氧胁迫的关系 | 第107-120页 |
| 1.材料与方法 | 第107-110页 |
| ·供试材料 | 第107页 |
| ·实验方法 | 第107-110页 |
| ·野生型和Osnaatl在不同Fe处理条件下Ethylene合成的测定 | 第107-108页 |
| ·Ethephon,ACC,AVG和AgNO_3的处理对对野生型和Osnaatl的影响 | 第108页 |
| ·Ethylene合成和信号调控相关基因的RT-PCR表达分析 | 第108页 |
| ·不同透气条件下野生型和Osnaatl栽培的表型观察 | 第108-109页 |
| ·Osnaatl和野生型在Fe(Ⅲ),缺Fe处理下,Ethylene合成相关和低氧胁迫诱导相关基因的芯片表达分析 | 第109-110页 |
| 2.结果与分析 | 第110-117页 |
| ·野生型Osnaatl中在不同供Fe条件下,根部Ethylene的生物合成变化 | 第110-111页 |
| ·野生型分别在Fe(Ⅲ)和缺Fe处理条件下,根部Ethylene合成的变化 | 第111页 |
| ·Ethylene、ACC以及不同Ethylene合成、作用抑制剂处理对Osnaatl的影响 | 第111-113页 |
| ·不同供Fe状态下,Ethylene生物合成Osnaatl和野生性根中的表达比较 | 第113-114页 |
| ·不同透气条件下野生型和Osnaatl的生长变化 | 第114-115页 |
| ·Osnaatl和野生型在Fe(Ⅲ),缺Fe处理条件下,水培处理的Ethylene相关和低氧诱导相关基因的芯片表达分析 | 第115-117页 |
| 3.讨论 | 第117-120页 |
| 第六章 小结和展望 | 第120-122页 |
| 参考文献 | 第122-133页 |
| 攻读博士学位期间发表的科研论文 | 第133页 |
