| 引言 | 第1-21页 |
| 1.M UC1 的研究背景 | 第7-10页 |
| ·MUC1 的基因结构与蛋白质组成 | 第7-8页 |
| ·MUC1 的分布 | 第8页 |
| ·MUC1 的生物学作用 | 第8-9页 |
| ·MUC1 的免疫学作用 | 第9-10页 |
| 2. 热休克蛋白的研究背景 | 第10-11页 |
| ·HSP 的分类 | 第10页 |
| ·HSP 的作用 | 第10-11页 |
| 3. ELISA 的研究背景 | 第11-14页 |
| ·ELISA 的原理 | 第11-12页 |
| ·ELISA 的类型 | 第12-14页 |
| 4. 药代动力学的发展现状 | 第14-21页 |
| ·生物检定法 | 第15-16页 |
| ·免疫学方法 | 第16-17页 |
| ·同位素标记示踪法 | 第17-18页 |
| ·色谱法 | 第18-21页 |
| 材料与方法 | 第21-35页 |
| 1. 实验材料 | 第21-23页 |
| ·实验动物 | 第21页 |
| ·重组蛋白 | 第21页 |
| ·主要试剂及设备 | 第21-22页 |
| ·试剂的配置 | 第22-23页 |
| 2. 双抗体夹心法检测 HSP65-MUC1 融合蛋白方法的建立及应用 | 第23-32页 |
| ·HSP65 多克隆抗体的制备 | 第23页 |
| ·HSP65 多克隆抗体效价的测定 | 第23-24页 |
| ·饱和(NH_4)_2SO_4 提纯HSP65 多克隆抗体 | 第24-25页 |
| ·Western blot 法 HSP65 多克隆抗体及MUC1 单克隆抗体特异性的鉴定 | 第25-27页 |
| ·以MUC1 单抗为包被抗体的双抗体夹心ELISA | 第27-31页 |
| ·以HSP65 多克隆抗体为包被抗体的双抗体夹心ELISA | 第31页 |
| ·以双抗体夹心法检测小鼠体内的HSP65-MUC1 的分布情况 | 第31-32页 |
| 3.间接法 ELISA 检测小鼠体内 HSP65-MUC1 抗体方法的建立 | 第32-35页 |
| ·间接法ELISA 的原理 | 第32-33页 |
| ·方阵滴定确定最佳抗原浓度及酶标二抗工作浓度 | 第33页 |
| ·等摩尔数HSP65-MUC1、HSP65 以及MUC1 多肽包被,检测抗体产生的量的比较(OD 值的比较) | 第33-35页 |
| 实验结果 | 第35-39页 |
| 1. 双抗体夹心法ELISA 方法的建立 | 第35-38页 |
| ·H SP65 多克隆抗体的获得及效价测定 | 第35页 |
| ·抗体特异性的鉴定 | 第35-36页 |
| ·夹心ELISA 最佳试剂的确定 | 第36-37页 |
| ·夹心法ELISA 方阵法最佳滴定浓度的确立 | 第37页 |
| ·标准曲线的确定 | 第37页 |
| ·小鼠组织匀浆HSP65-MUC1 的测定 | 第37-38页 |
| 2. 间接ELISA 检测HSP65-MUC1 抗体方法的建立 | 第38-39页 |
| ·方阵法确定包被抗原包被浓度及酶标抗体浓度 | 第38页 |
| ·等摩尔数HSP65-MUC1、HSP65 以及MUC1 多肽包被,检测抗体产生量的比较(OD 值的比较) | 第38-39页 |
| 讨论 | 第39-44页 |
| 1. 夹心法 ELISA 检测 HSP65-MUC1 融合蛋白方法的建立 | 第39-42页 |
| ·HSP65 多克隆抗体的制备 | 第39-40页 |
| ·以MUC1 单克隆抗体为包被抗体的双抗体夹心ELISA | 第40-41页 |
| ·夹心ELISA 最佳反应条件的选择 | 第41-42页 |
| ·小鼠体内HSP65-MUC1 代谢情况的检测 | 第42页 |
| 2. 间接 ELISA 检测 HSP65-MUC1 抗体方法的建立 | 第42-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-65页 |
| 中文摘要 | 第65-68页 |
| ABSTRACT | 第68-72页 |
| 英文缩写词表 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 导师简介 | 第75-76页 |
| 作者简介 | 第76页 |
