| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 目录 | 第12-14页 |
| 英汉缩略语名词对照表 | 第14-16页 |
| 前言 | 第16-22页 |
| 第一章 脂多糖诱导人肝细胞释放HMGB1的过程研究 | 第22-64页 |
| ·材料与方法 | 第22-34页 |
| ·细胞株 | 第22页 |
| ·试剂和材料 | 第22-24页 |
| ·主要仪器 | 第24-25页 |
| ·分组与干预 | 第25页 |
| ·细胞存活率测定 | 第25-26页 |
| ·细胞培养上清液LDH含量测定 | 第26页 |
| ·HE染色观察各组细胞形态 | 第26-27页 |
| ·DAPI染核观察各组细胞核形态 | 第27页 |
| ·荧光TUNEL检测细胞凋亡 | 第27-28页 |
| ·流式细胞技术检测细胞凋亡 | 第28页 |
| ·RT-PCR检测细胞HMGB1mRNA表达水平 | 第28-31页 |
| ·Western blot分析上清HMGB1蛋白含量 | 第31-33页 |
| ·细胞免疫荧光观察HMGB1蛋白移位 | 第33页 |
| ·统计学方法 | 第33-34页 |
| ·实验结果 | 第34-57页 |
| ·LPS刺激浓度的确定 | 第34-35页 |
| ·LPS作用不同时间点HepG2,L02及U937细胞存活率 | 第35-36页 |
| ·LPS作用不同时间点HepG2,L02及U937细胞上清LDH含量 | 第36-38页 |
| ·LPS刺激对HepG2,L02及U937细胞形态的影响 | 第38-42页 |
| ·LPS刺激对HepG2,L02及U937细胞凋亡的影响 | 第42-46页 |
| ·LPS作用对HepG2,L02及U937细胞HMGB1移位的影响 | 第46-53页 |
| ·LPS刺激对HepG2,L02及U937细胞分泌HMGB1蛋白的影响 | 第53-55页 |
| ·LPS刺激对HepG2,L02及U937细胞HMGB1mRNA表达水平的影响 | 第55-57页 |
| ·讨论 | 第57-63页 |
| ·结论 | 第63-64页 |
| 第二章 天然分泌型HMGB1蛋白的初步纯化 | 第64-81页 |
| ·材料与方法 | 第64-72页 |
| ·试剂和材料 | 第64-65页 |
| ·主要仪器 | 第65-66页 |
| ·液体配制 | 第66-68页 |
| ·蛋白沉淀 | 第68页 |
| ·考马斯亮蓝法测定蛋白浓度 | 第68页 |
| ·二维凝胶电泳 | 第68-69页 |
| ·层析 | 第69-71页 |
| ·超滤浓缩 | 第71-72页 |
| ·银染 | 第72页 |
| ·Western blot验证各组分中的HMGB1蛋白 | 第72页 |
| ·结果 | 第72-79页 |
| ·二维凝胶电泳 | 第72-73页 |
| ·蛋白沉淀法所得蛋白初步层析图 | 第73页 |
| ·分子筛Sephadex G50/G75/G100层析峰 | 第73-74页 |
| ·离子交换层析图 | 第74-75页 |
| ·超滤浓缩的分离效果 | 第75-76页 |
| ·Western blot检测层析各组分HMGB1蛋白 | 第76-77页 |
| ·初步序贯分离结果 | 第77-79页 |
| ·讨论 | 第79-80页 |
| ·结论 | 第80-81页 |
| 总结论 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-90页 |
| 综述 | 第90-110页 |
| 参考文献 | 第102-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
| 攻读学位期间参与的项目及发表的文章 | 第111-112页 |
