摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
目录 | 第7-10页 |
1 文献综述 | 第10-25页 |
·盐土植物资源的前景 | 第10-11页 |
·植物盐胁迫应答机制 | 第11-15页 |
·渗透调节 | 第11-12页 |
·离子区隔化 | 第12-13页 |
·活性氧伤害 | 第13页 |
·相溶性溶质 | 第13-15页 |
·植物体内的脯氨酸积累 | 第15-20页 |
·脯氨酸代谢调控 | 第15-16页 |
·脯氨酸生物合成的谷氨酸和鸟氨酸途径 | 第16-20页 |
·谷氨酸途径 | 第18页 |
·鸟氨酸途径 | 第18-20页 |
·多胺在逆境胁迫方面的研究 | 第20-22页 |
·多胺代谢 | 第20页 |
·多胺与逆境胁迫的关系 | 第20-22页 |
·多胺与渗透胁迫的关系 | 第20-21页 |
·多胺与水分胁迫的关系 | 第21页 |
·多胺与低温胁迫的关系 | 第21-22页 |
·多胺与盐胁迫的关系 | 第22页 |
·多胺与酸胁迫的关系 | 第22页 |
·海滨锦葵耐盐性研究进展 | 第22-24页 |
·本文技术路线和研究意义 | 第24-25页 |
2 外源精胺对盐胁迫下海滨锦葵耐盐性的影响 | 第25-38页 |
·材料与处理 | 第25-26页 |
·植物材料 | 第25页 |
·主要仪器 | 第25-26页 |
·主要试剂 | 第26页 |
·实验处理 | 第26页 |
·测定方法 | 第26-30页 |
·样品鲜重、干重测定 | 第26-27页 |
·脯氨酸和丙二醛含量测定 | 第27-28页 |
·脯氨酸含量测定 | 第27页 |
·丙二醛(MDA)含量测定 | 第27-28页 |
·抗氧化酶活性的测定 | 第28-30页 |
·SOD活性的测定 | 第28-29页 |
·CAT活性的测定 | 第29页 |
·POD活性的测定 | 第29-30页 |
·数据分析 | 第30页 |
·结果与分析 | 第30-36页 |
·SPM对于盐胁迫下海滨锦葵幼苗根和叶干重的影响 | 第30-31页 |
·SPM对于盐胁迫下海滨锦葵幼苗脯氨酸和丙二醛含量的影响 | 第31-33页 |
·SPM对于盐胁迫下海滨锦葵幼苗脯氨酸含量的影响 | 第31-32页 |
·SPM对盐胁迫下海滨锦葵幼苗丙二醛含量的影响 | 第32-33页 |
·SPM对于盐胁迫下海滨锦葵幼苗抗氧化酶活性的影响 | 第33-36页 |
·SPM对盐胁迫下海滨锦葵幼苗CAT活性的影响 | 第33-34页 |
·SPM对海滨锦葵幼苗SOD活性影响 | 第34-35页 |
·SPM对海滨锦葵幼苗POD活性影响 | 第35-36页 |
·讨论 | 第36-38页 |
·多胺在抗逆方面的复杂性 | 第36页 |
·植物细胞吸收外源多胺的机制 | 第36-37页 |
·抗氧化酶的协同效应 | 第37-38页 |
3 外源精胺对脯氨酸合成途径关键酶基因表达影响 | 第38-50页 |
·材料和方法 | 第38-39页 |
·植物材料 | 第38-39页 |
·主要仪器 | 第39页 |
·主要试剂 | 第39页 |
·实验处理 | 第39页 |
·Real-time RT-PCR分析P5CS和OAT基因 | 第39-41页 |
·RNA提取 | 第39-40页 |
·cDNA的合成 | 第40页 |
·Real-time RT-PCR | 第40-41页 |
·内参actin,P5CS和OAT的引物设计及其扩增 | 第40-41页 |
·Real-time RT-PCR体系和反应程序 | 第41页 |
·相对定量分析 | 第41页 |
·结果与分析 | 第41-47页 |
·NaCl胁迫下海滨锦葵P5CS和OAT基因表达分析 | 第41-42页 |
·200mM NaCl胁迫下海滨锦葵P5CS和OAT基因相对定量表达 | 第42-44页 |
·SPM对盐胁迫下海滨锦葵P5CS和OAT基因表达影响 | 第44-47页 |
·SPM对根中P5CS和OAT的表达影响 | 第44-45页 |
·SPM对叶中P5CS和OAT的表达影响 | 第45-47页 |
·讨论 | 第47-50页 |
·海滨锦葵NaCl胁迫下谷氨酸/鸟氨酸途径 | 第47页 |
·SPM对盐胁迫下海滨锦葵脯氨酸合成途径的影响 | 第47-48页 |
·展望 | 第48-50页 |
4 结论 | 第50-52页 |
参考文献 | 第52-62页 |
致谢 | 第62-63页 |
个人简历 在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第63页 |