| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 研究现状、成果 | 第14-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-17页 |
| 一、血必净对LPS刺激内皮细胞增殖和释放LDH、TF、PAF的影响 | 第17-32页 |
| 1.1 材料和方法 | 第17-24页 |
| 1.1.1 实验仪器 | 第17-18页 |
| 1.1.2 实验动物与试剂 | 第18-19页 |
| 1.1.3 实验准备 | 第19页 |
| 1.1.4 内皮细胞分离和培养 | 第19-20页 |
| 1.1.5 细胞纯度鉴定（免疫细胞化学染色法） | 第20-21页 |
| 1.1.6 LPS的配置及筛选合适浓度LPS | 第21-22页 |
| 1.1.7 血必净对LPS刺激内皮细胞增殖和释放LDH、TF、PAF的检测… | 第22-24页 |
| 1.1.8 统计学分析 | 第24页 |
| 1.2 结果 | 第24-30页 |
| 1.2.1 内皮细胞纯度鉴定 | 第24页 |
| 1.2.2 不同浓度LPS对内皮细胞增殖、细胞损伤率的影响 | 第24-27页 |
| 1.2.3 血必净对LPS刺激内皮细胞增殖和释放LDH、TF、PAF的影响… | 第27-30页 |
| 1.3 讨论 | 第30-31页 |
| 1.4 小结 | 第31-32页 |
| 二、血必净对IRE1α信号通路各蛋白表达及FⅩa水平的影响 | 第32-44页 |
| 2.1 对象和方法 | 第32-39页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第32-33页 |
| 2.1.2 实验动物、试剂与耗材 | 第33-34页 |
| 2.1.3 大鼠腹主动脉来源内皮细胞的分离、培养与鉴定 | 第34-35页 |
| 2.1.4 发色底物法检测FⅩa表达水平 | 第35页 |
| 2.1.5 蛋白的提取及定量 | 第35-37页 |
| 2.1.6 Western blot检测IRE1α信号通路各蛋白表达量 | 第37-38页 |
| 2.1.7 血必净预处理细胞后FⅩa的检测 | 第38页 |
| 2.1.8 统计学分析 | 第38-39页 |
| 2.2 结果 | 第39-41页 |
| 2.2.1 抑制IRE1α信号通路后FⅩa表达下降 | 第39页 |
| 2.2.2 血必净对IRE1α信号通路的影响 | 第39-41页 |
| 2.2.3 血必净可减少FⅩa表达水平 | 第41页 |
| 2.3 讨论 | 第41-43页 |
| 2.4 小结 | 第43-44页 |
| 三、血必净通过抑制IRE1α通路改善脓毒症大鼠凝血功能及存活率 | 第44-58页 |
| 3.1 对象和方法 | 第44-49页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第44-45页 |
| 3.1.2 试剂及耗材 | 第45-46页 |
| 3.1.3 大鼠CLP模型的制备 | 第46-47页 |
| 3.1.4 大鼠腹腔注射血必净和尾静脉注射IRE1α抑制剂 | 第47页 |
| 3.1.5 测腹主动脉IRE1α通路上蛋白表达量 | 第47页 |
| 3.1.6 血清中TF和PAF的检测 | 第47-48页 |
| 3.1.7 采用化学发光底物法检测动脉血上清中FⅩa的变化 | 第48页 |
| 3.1.8 检测各组大鼠凝血功能 | 第48-49页 |
| 3.1.9 血必净和IRE1α抑制剂可改善脓毒症大鼠生存率 | 第49页 |
| 3.1.10 统计学处理 | 第49页 |
| 3.2 结果 | 第49-55页 |
| 3.2.1 血必净可抑制IRE1α信号通路 | 第49-51页 |
| 3.2.2 各组大鼠血清中TF、PAF变化 | 第51-52页 |
| 3.2.3 给予血必净和IRE1α抑制剂后FⅩa产生减少 | 第52-53页 |
| 3.2.4 血必净、IRE1α抑制剂后可改善脓毒症大鼠凝血功能 | 第53-55页 |
| 3.2.5 腹腔注射血必净、尾静脉IRE1α抑制剂后可改善脓毒症大鼠存活率 | 第55页 |
| 3.3 讨论 | 第55-57页 |
| 3.4 小结 | 第57-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第65-66页 |
| 综述 组织因子凝血活性变化及脓毒症时蛋白质异构酶对其作用影响研究进展 | 第66-76页 |
| 参考文献 | 第73-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 个人简历 | 第77页 |
