| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8页 |
| 第1章 绪论 | 第9-17页 |
| 1.1 哮喘 | 第9-12页 |
| 1.1.1 现代医学对哮喘发病机制的研究 | 第9-11页 |
| 1.1.2 支气管哮喘的治疗进展 | 第11-12页 |
| 1.2 番泻叶和大黄素 | 第12-15页 |
| 1.2.1 概述 | 第12-13页 |
| 1.2.2 番泻叶化学成分 | 第13页 |
| 1.2.3 番泻叶的药理作用 | 第13-14页 |
| 1.2.4 大黄素的药理作用 | 第14-15页 |
| 1.3 本文构想 | 第15-17页 |
| 1.3.1 研究目的 | 第15页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第15-16页 |
| 1.3.3 结果 | 第16-17页 |
| 第2章 实验材料、仪器和试剂 | 第17-24页 |
| 2.1 实验材料 | 第17页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第17页 |
| 2.1.2 中药材 | 第17页 |
| 2.2 实验试剂 | 第17-19页 |
| 2.3 实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.4 实验耗材 | 第20页 |
| 2.5 实验溶液配制 | 第20-24页 |
| 第3章 实验方法 | 第24-30页 |
| 3.1 番泻叶乙醇部有效成分的提取 | 第24页 |
| 3.2 气管环张力实验 | 第24-25页 |
| 3.2.1 调试肌张力换能器实验系统 | 第24页 |
| 3.2.2 分离小鼠气管环 | 第24-25页 |
| 3.2.3 气管环上样及实验前期平衡 | 第25页 |
| 3.3 肺切片技术与支气管张力测定 | 第25-26页 |
| 3.3.1 肺切片的技术方法 | 第25页 |
| 3.3.2 小鼠支气管的张力测定 | 第25-26页 |
| 3.4 小鼠气管平滑肌细胞分离方法 | 第26页 |
| 3.4.1 小鼠气管平滑肌肌条的获取 | 第26页 |
| 3.4.2 分离气管平滑肌细胞 | 第26页 |
| 3.5 Western blot检测MYPT1的磷酸化水平 | 第26-29页 |
| 3.5.1 气管平滑肌蛋白的提取 | 第26-27页 |
| 3.5.2 蛋白浓度的测定 | 第27-28页 |
| 3.5.3 Western blot | 第28-29页 |
| 3.6 高效液相分析技术 | 第29页 |
| 3.6.1 样品及标准品配制 | 第29页 |
| 3.6.2 高效液相 | 第29页 |
| 3.7 数据分析 | 第29-30页 |
| 第4章 实验结果 | 第30-39页 |
| 4.1 番泻叶乙醇部提取物(EEFS)舒张小鼠气管平滑肌 | 第30-32页 |
| 4.1.1 EEFS剂量依赖性地抑制了ACh诱导的小鼠气管平滑肌的收缩 | 第30-31页 |
| 4.1.2 EEFS对ACh诱导的小鼠肺内支气管预收缩的影响 | 第31页 |
| 4.1.3 EEFS舒张ACh诱导的人气管平滑肌的预收缩 | 第31-32页 |
| 4.2 大黄素舒张小鼠气管平滑肌 | 第32-34页 |
| 4.2.1 引言 | 第32-33页 |
| 4.2.2 EEFS中含有单体大黄素 | 第33页 |
| 4.2.3 大黄素舒张ACh诱导的小鼠气管平滑肌的预收缩 | 第33-34页 |
| 4.2.4 大黄素抑制小鼠肺内支气管平滑肌的收缩 | 第34页 |
| 4.3 大黄素舒张气管的作用机制 | 第34-39页 |
| 4.3.1 引言 | 第34-35页 |
| 4.3.2 LVDCCs、SOCs和钙敏感介导ACh诱导的小鼠气管平滑肌预收缩 | 第35-36页 |
| 4.3.3 大黄素抑制LVDCCs电流 | 第36-37页 |
| 4.3.4 大黄素抑制由ACh激活的SOCs电流 | 第37-38页 |
| 4.3.5 大黄素降低MYPT1磷酸化水平 | 第38-39页 |
| 第5章 讨论 | 第39-41页 |
| 参考文献 | 第41-46页 |
| 致谢 | 第46页 |
