| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-18页 |
| 1.1 研究背景 | 第12-16页 |
| 1.1.1 脑胶质瘤 | 第12-13页 |
| 1.1.2 能量代谢在肿瘤进展中的作用 | 第13-15页 |
| 1.1.3 上皮间质转化(EMT) | 第15-16页 |
| 1.2 本研究目的、内容与技术路线 | 第16-18页 |
| 1.2.1 目的和意义 | 第16页 |
| 1.2.2 研究内容 | 第16-17页 |
| 1.2.3 研究技术路线图 | 第17-18页 |
| 第二章 LDHA对胶质瘤细胞增殖的影响 | 第18-38页 |
| 2.1 材料和方法 | 第18-30页 |
| 2.1.1 胶质瘤细胞和质粒 | 第18页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.3 实验耗材和和试剂 | 第19-21页 |
| 2.1.4 常用溶液的配制 | 第21-22页 |
| 2.1.5 细胞培养 | 第22-24页 |
| 2.1.6 定量PCR | 第24-25页 |
| 2.1.7 细胞转染 | 第25-26页 |
| 2.1.8 筛选稳转细胞 | 第26页 |
| 2.1.9 WesternBlot | 第26-29页 |
| 2.1.10 CellCountingKit-8(CCK-8)实验 | 第29页 |
| 2.1.11 克隆形成实验 | 第29页 |
| 2.1.12 LDH活性测定实验 | 第29-30页 |
| 2.1.13 细胞凋亡检测 | 第30页 |
| 2.1.14 统计学分析 | 第30页 |
| 2.2 结果 | 第30-36页 |
| 2.2.1 LDHA在三种不同胶质瘤细胞中的表达 | 第30-31页 |
| 2.2.2 敲低LDHA对U87MG细胞LDH活性的影响 | 第31-32页 |
| 2.2.3 LDHA对胶质瘤细胞增殖能力的影响 | 第32-35页 |
| 2.2.4 敲低LDHA对U87MG细胞凋亡的影响 | 第35-36页 |
| 2.3 讨论 | 第36-38页 |
| 第三章 LDHA对胶质瘤细胞迁移的影响 | 第38-48页 |
| 3.1 材料和方法 | 第38-45页 |
| 3.1.1 胶质瘤细胞和质粒 | 第38页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第38-39页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第39-40页 |
| 3.1.4 常用溶液的配制 | 第40-41页 |
| 3.1.5 细胞培养 | 第41-42页 |
| 3.1.6 定量PCR | 第42-44页 |
| 3.1.7 细胞转染 | 第44页 |
| 3.1.8 划痕实验 | 第44页 |
| 3.1.9 transwell迁移实验 | 第44-45页 |
| 3.1.10 统计分析 | 第45页 |
| 3.2 结果 | 第45-46页 |
| 3.2.1 LDHA对胶质瘤细胞迁移能力的影响 | 第45-46页 |
| 3.3 讨论 | 第46-48页 |
| 第四章 敲低LDHA抑制人脑胶质瘤细胞间质转化 | 第48-57页 |
| 4.1 材料和方法 | 第48-55页 |
| 4.1.1 胶质瘤细胞和质粒 | 第48页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第48-49页 |
| 4.1.3 实验试剂 | 第49-50页 |
| 4.1.4 常用溶液的配制 | 第50-51页 |
| 4.1.5 细胞培养 | 第51-52页 |
| 4.1.6 细胞转染 | 第52-53页 |
| 4.1.7 WesternBlot | 第53-55页 |
| 4.1.8 数据处理与统计方法 | 第55页 |
| 4.2 结果 | 第55-56页 |
| 4.2.1 下调LDHA对胶质瘤细胞EMT过程的影响 | 第55-56页 |
| 4.3 讨论 | 第56-57页 |
| 第五章 主要结论和展望 | 第57-58页 |
| 5.1 主要结论 | 第57页 |
| 5.2 工作展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 综述 | 第64-75页 |
| 参考文献 | 第71-75页 |
| 致谢 | 第75页 |
