| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 缩略词表 | 第11-12页 |
| 引言 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-27页 |
| 1 植物HSF家族转录因子研究进展 | 第13-18页 |
| 1.1 植物HSF家族转录因子的类别与功能 | 第13-16页 |
| 1.1.1 植物HSF家族转录因子的结构特点与分类 | 第14-15页 |
| 1.1.2 植物HSF家族转录因子的抗逆性功能 | 第15-16页 |
| 1.2 植物HSF家族转录因子应答逆境胁迫的调控机制 | 第16-18页 |
| 1.2.1 HSFs与HSPs、HSFs形成复合体应答胁迫 | 第16-17页 |
| 1.2.2 HSFs通过调控不同信号路径调控抗逆性 | 第17页 |
| 1.2.3 HSFs与其他因子协同应答胁迫 | 第17-18页 |
| 2 植物耐盐性研究进展 | 第18-21页 |
| 2.1 离子稳态调节 | 第19-20页 |
| 2.2 活性氧的清除 | 第20-21页 |
| 3 植物抗蚜性机制 | 第21-24页 |
| 3.1 植物抗蚜性机制类型 | 第21-23页 |
| 3.1.1 组成型抗性 | 第21-22页 |
| 3.1.2 诱导型抗性 | 第22-23页 |
| 3.2 蚜虫诱导的植物免疫反应 | 第23-24页 |
| 4 菊花抗逆性研究进展及本研究的目的意义 | 第24-27页 |
| 第二章 菊花CmHSFA4基因克隆与功能鉴定 | 第27-43页 |
| 1 材料与方法 | 第28-33页 |
| 1.1 植物材料、表达载体与菌株 | 第28页 |
| 1.2 CmHSFA4基因克隆、序列分析及系统进化树构建 | 第28页 |
| 1.3 CmHSFA4亚细胞定位与转录激活性分析 | 第28-31页 |
| 1.3.1 亚细胞定位分析 | 第28-31页 |
| 1.3.2 转录激活活性分析: | 第31页 |
| 1.4 CmHSFA4基因的表达特性分析 | 第31-32页 |
| 1.5 CmHSFA4在'神马'中的遗传转化 | 第32页 |
| 1.6 转基因植株的盐处理及耐盐性鉴定 | 第32-33页 |
| 1.6.1 转基因植株盐胁迫下离子含量的检测 | 第32页 |
| 1.6.2 转基因植株盐胁迫下生理指标的检测 | 第32页 |
| 1.6.3 转基因株系在盐处理下离子转运及ROS清除基因的表达分析 | 第32-33页 |
| 1.7 数据分析 | 第33页 |
| 2 结果与分析 | 第33-40页 |
| 2.1 CmHSFA4基因克隆、序列分析及系统进化关系 | 第33-34页 |
| 2.2 CmHSFA4亚细胞定位特性及转录激活活性 | 第34-35页 |
| 2.2.1 亚细胞定位分析 | 第34-35页 |
| 2.2.2 转录激活活性分析 | 第35页 |
| 2.3 CmHSFA4表达特性 | 第35-36页 |
| 2.3.1 不同组织器官中CmHSFA4的表达特性 | 第35-36页 |
| 2.3.2 盐胁迫下CmHSFA4的表达分析 | 第36页 |
| 2.4 CmHSFA4转基因菊花分子鉴定 | 第36-37页 |
| 2.5 CmHSFA4转基因菊花耐盐性鉴定及耐盐机理 | 第37-40页 |
| 2.5.1 转基因植株盐胁迫下存活率分析 | 第37-38页 |
| 2.5.2 转基因植株盐胁迫下离子含量的检测 | 第38-39页 |
| 2.5.3 转基因植株盐胁迫下活性氧水平及其清除酶活性 | 第39页 |
| 2.5.4 转基因株系在盐处理下离子转运及ROS清除基因的表达分析 | 第39-40页 |
| 3 讨论 | 第40-43页 |
| 3.1 CmHSFA4序列特征及耐盐性功能 | 第40-41页 |
| 3.2 CmHSFA4通过调节离子转运响应盐胁迫 | 第41-42页 |
| 3.3 CmHSFA4通过减少活性氧累积及增加活性氧清除能力提高耐盐性 | 第42-43页 |
| 第三章 CmHSFB1基因克隆与功能分析 | 第43-57页 |
| 1 材料与方法 | 第43-45页 |
| 1.1 材料 | 第43-44页 |
| 1.2 CmHSFB1基因克隆、序列分析及系统进化树构建 | 第44页 |
| 1.3 CmHSFB1亚细胞定位与转录激活性分析 | 第44页 |
| 1.3.1 CmHSFB1亚细胞定位分析 | 第44页 |
| 1.3.2 CmHSFB1转录激活性活分析 | 第44页 |
| 1.4 CmHSFB1表达特性分析 | 第44-45页 |
| 1.5 CmHSFB1在'神马'中的遗传转化 | 第45页 |
| 1.6 CmHSFB1转基因植株抗蚜性鉴定 | 第45页 |
| 1.6.1 转基因菊花抗蚜性评价 | 第45页 |
| 1.6.2 转基因菊花接种蚜虫后活性氧含量测定 | 第45页 |
| 1.6.3 转基因株系接种蚜虫后ROS信号相关基因的表达分析 | 第45页 |
| 1.7 数据分析 | 第45页 |
| 2 结果与分析 | 第45-53页 |
| 2.1 CmHSFB1转录因子克隆、序列分析及系统进化关系 | 第45-46页 |
| 2.2 CmHSFB1亚细胞定位特性与转录激活活性 | 第46-48页 |
| 2.3 CmHSFB1表达特性 | 第48-49页 |
| 2.3.1 不同组织器官中CmHSFB1的表达分析 | 第48-49页 |
| 2.3.2 不同组蚜虫胁迫与机械伤害处理下CmHSFB1的表达分析 | 第49页 |
| 2.4 CmHSFB1的转基因菊花分子鉴定 | 第49-50页 |
| 2.5 CmHSFB1转基因植株抗蚜性及抗蚜机理 | 第50-53页 |
| 2.5.1 CmHSFB1转基因植株抗蚜性评价 | 第50-52页 |
| 2.5.2 CmHSFB1转基因株系接种蚜虫后ROS水平 | 第52页 |
| 2.5.3 CmHSFB1转基因株系接种蚜虫后ROS信号基因定量分析 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-57页 |
| 3.1 CmHSFB1序列特征及功能特性研究 | 第53-54页 |
| 3.2 CmHSFB1通过调节ROS信号基因及HSPs基因表达响应蚜虫取食 | 第54-57页 |
| 全文结论 | 第57-59页 |
| 创新点 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-75页 |
| 附录 | 第75-91页 |
| 攻读学位期间发表论文及所获奖励 | 第91-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
