| 摘要 | 第4-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 关键缩略词中英文对照表 | 第16-18页 |
| 第一章 综述 | 第18-31页 |
| 1 巴马小型猪疾病模型的发展和应用 | 第18-21页 |
| 1.1 巴马小型猪疾病模型在医学领域中的应用 | 第18-20页 |
| 1.2 巴马小型猪T2DM疾病模型的建立和应用 | 第20-21页 |
| 2 生物组学技术的发展和应用 | 第21-24页 |
| 2.1 转录组学的发展和应用 | 第21-22页 |
| 2.2 蛋白组学的发展和应用 | 第22-24页 |
| 3 影响T2DM发生发展的信号通路研究进展 | 第24-30页 |
| 3.1 糖原合成和葡萄糖氧化代谢与T2DM的关系 | 第24-25页 |
| 3.2 胰岛素信号传导通路与T2DM的关系 | 第25-26页 |
| 3.3 脂肪酸氧化代谢信号通路与T2DM的关系 | 第26-27页 |
| 3.4 线粒体功能相关信号通路与T2DM的关系 | 第27-28页 |
| 3.5 氧化应激与T2DM的关系 | 第28页 |
| 3.6 炎症反应信号通路与T2DM的关系 | 第28-29页 |
| 3.7 肌纤维类型转化信号通路与T2DM的关系 | 第29-30页 |
| 3.8 运动与T2DM的关系 | 第30页 |
| 4 研究目的及意义 | 第30-31页 |
| 第二章 广西巴马小型猪T2DM模型的制作 | 第31-48页 |
| 1 材料与方法 | 第31-34页 |
| 1.1 试验材料 | 第31-32页 |
| 1.2 试验方法 | 第32-34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-45页 |
| 2.1 体重及器官相关指标变化 | 第34-37页 |
| 2.2 相关生理生化指标测定及静脉葡萄糖耐量试验结果分析 | 第37-43页 |
| 2.3 组织切片观察 | 第43-45页 |
| 3 讨论 | 第45-47页 |
| 4 小结 | 第47-48页 |
| 第三章 T2DM巴马小型猪骨骼肌转录组测序分析 | 第48-74页 |
| 1 材料与方法 | 第48-53页 |
| 1.1 试验材料 | 第48-49页 |
| 1.2 试验方法 | 第49-53页 |
| 2 结果与分析 | 第53-71页 |
| 2.1 转录组数据分析 | 第53-65页 |
| 2.2 qPCR验证结果 | 第65-67页 |
| 2.3 T2DM巴马小型猪与人T2DM患者骨骼肌转录组比较分析 | 第67-71页 |
| 3 讨论 | 第71-73页 |
| 4 小结 | 第73-74页 |
| 第四章 T2D与NT2D巴马小型猪蛋白质组差异分析 | 第74-95页 |
| 1 材料与方法 | 第74-76页 |
| 1.1 试验材料 | 第74页 |
| 1.2 试验方法 | 第74-76页 |
| 2 结果与分析 | 第76-91页 |
| 2.1 TRAQ结果分析 | 第76-85页 |
| 2.2 PRM结果分析 | 第85-87页 |
| 2.3 蛋白组与转录组联合分析 | 第87-91页 |
| 3 讨论 | 第91-94页 |
| 4 小结 | 第94-95页 |
| 第五章 CSRP3基因在T2DM发病机制中的作用研究 | 第95-130页 |
| 1 材料与方法 | 第95-103页 |
| 1.1 试验材料 | 第95-97页 |
| 1.2 试验方法 | 第97-103页 |
| 2 结果与分析 | 第103-126页 |
| 2.1 巴马小型猪CSRP3基因真核表达载体构建与生物信息学分析 | 第103-110页 |
| 2.2 CSRP3基因骨骼肌表达作用分析 | 第110-118页 |
| 2.3 CSRP3基因功能细胞验证 | 第118-126页 |
| 3 讨论 | 第126-128页 |
| 4 小结 | 第128-130页 |
| 第六章 结论和创新点 | 第130-132页 |
| 1 结论 | 第130-131页 |
| 2 创新点 | 第131-132页 |
| 参考文献 | 第132-153页 |
| 附录 | 第153-161页 |
| 致谢 | 第161-162页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第162页 |
