摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
第一章 引言 | 第13-30页 |
1.1 贝壳及初生贝壳发生过程 | 第13-16页 |
1.1.1 贝壳的组成及结构 | 第13页 |
1.1.2 初生贝壳发生 | 第13-16页 |
1.2 贝壳发生机制的研究进展 | 第16-21页 |
1.2.1 调控贝壳发生的转录因子 | 第16-19页 |
1.2.2 贝壳发生的生物合成基因 | 第19-21页 |
1.3 GATA、Sox等转录因子简介 | 第21-25页 |
1.3.1 GATA基因 | 第21-23页 |
1.3.2 Sox基因 | 第23页 |
1.3.3 Pax基因 | 第23-25页 |
1.3.4 Hox基因 | 第25页 |
1.4 初生贝壳发生中的细胞群体 | 第25-27页 |
1.4.1 贝壳发生区外缘表达的基因 | 第25-26页 |
1.4.2 贝壳发生区内表达的基因 | 第26页 |
1.4.3 贝壳发生区的细胞群体 | 第26-27页 |
1.5 小G蛋白CDC42的简介 | 第27-28页 |
1.6 本研究的目的意义 | 第28-30页 |
第二章 长牡蛎四个贝壳发生相关基因的鉴定及表达模式分析 | 第30-56页 |
2.1 研究背景 | 第30页 |
2.2 材料与方法 | 第30-34页 |
2.2.1 幼虫培养 | 第30-31页 |
2.2.2 RNA提取 | 第31页 |
2.2.3 基因扩增用cDNA的合成 | 第31页 |
2.2.4 Real Time PCR用cDNA的合成 | 第31页 |
2.2.5 Real Time PCR | 第31-32页 |
2.2.6 基因的克隆、生物信息学分析及演化分析 | 第32-33页 |
2.2.7 整装原位杂交 | 第33-34页 |
2.3 结果 | 第34-53页 |
2.3.1 cgi-gata2/3 基因的序列特征、演化及表达模式分析 | 第34-41页 |
2.3.2 cgi-soxc基因的序列特征、演化及表达模式分析 | 第41-47页 |
2.3.3 cgi-pax2/5/8 基因的序列特征、演化及表达模式分析 | 第47-51页 |
2.3.4 cgi-lox4基因的序列特征及表达模式分析 | 第51-53页 |
2.4 讨论 | 第53-54页 |
2.5 小结 | 第54-56页 |
第三章 长牡蛎初生贝壳发生过程中不同细胞群体的鉴定 | 第56-71页 |
3.1 研究背景 | 第56-57页 |
3.2 材料与方法 | 第57-58页 |
3.2.1 幼虫培养 | 第57页 |
3.2.2 幼虫RNA提取 | 第57页 |
3.2.3 基因扩增用cDNA的合成 | 第57页 |
3.2.4 双色整装原位杂交 | 第57-58页 |
3.3 结果 | 第58-68页 |
3.3.1 长牡蛎原肠胚贝壳发生区不同细胞群体 | 第58-65页 |
3.3.2 长牡蛎D形幼虫阶段外套膜不同细胞类群 | 第65-68页 |
3.4 讨论 | 第68-70页 |
3.5 小结 | 第70-71页 |
第四章 CDC42在长牡蛎贝壳发生中的作用研究 | 第71-94页 |
4.1 研究背景 | 第71页 |
4.2 材料与方法 | 第71-73页 |
4.2.1 幼虫培养 | 第71页 |
4.2.2 幼虫RNA提取 | 第71页 |
4.2.3 基因扩增用cDNA的合成 | 第71-72页 |
4.2.4 cgi-cdc42,cgi-par3和cgi-aPKC的序列特征及演化分析 | 第72页 |
4.2.5 整装原位杂交 | 第72页 |
4.2.6 免疫组织化学 | 第72-73页 |
4.2.7 抑制剂处理 | 第73页 |
4.2.8 扫描电子显微镜观察 | 第73页 |
4.3 结果 | 第73-91页 |
4.3.1 cgi-cdc42基因的序列特征、演化及表达模式分析 | 第73-77页 |
4.3.2 cgi-cdc42相关基因的序列特征、演化及表达模式分析 | 第77-85页 |
4.3.4 cdc42抑制剂处理后表型变化 | 第85-86页 |
4.3.5 抑制剂处理后贝壳发生相关基因表达的变化 | 第86-89页 |
4.3.6 抑制剂处理后cdc42及相关基因表达的变化 | 第89-90页 |
4.3.7 抑制剂处理后其他基因表达的变化 | 第90-91页 |
4.4 讨论 | 第91-92页 |
4.5 小结 | 第92-94页 |
第五章 总结与展望 | 第94-95页 |
参考文献 | 第95-105页 |
致谢 | 第105-106页 |
作者简历及攻读博士学位期间发表和完成的学术论文 | 第106页 |