| 中文摘要 | 第4-6页 |
| 英文摘要 | 第6-14页 |
| 第一部分: 前言 | 第14-31页 |
| 1.1 糖尿病周围神经病变(DPN) | 第14-16页 |
| 1.1.1 糖尿病(DM)的概念及发病机制 | 第14页 |
| 1.1.2 糖尿病周围神经病变(DPN)的概念、病变特点及发病机制 | 第14-16页 |
| 1.1.2.1 DPN的概念和现状 | 第14-15页 |
| 1.1.2.2 DPN功能变化和病理变化 | 第15-16页 |
| 1.1.2.3 DPN发病机制 | 第16页 |
| 1.2 DPN的治疗 | 第16-18页 |
| 1.2.1 DPN治疗的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.2.2 DSD治疗糖尿病周围神经病变的理论依据 | 第17-18页 |
| 1.3 周围神经髓鞘 | 第18-25页 |
| 1.3.1 神经髓鞘的结构和功能 | 第18-22页 |
| 1.3.1.1 神经髓鞘中的脂质成分和功能 | 第19-21页 |
| 1.3.1.2 神经髓鞘中的蛋白成分 | 第21页 |
| 1.3.1.3 神经髓鞘的结构 | 第21页 |
| 1.3.1.4 神经髓鞘的功能 | 第21-22页 |
| 1.3.2 施万细胞与髓鞘形成 | 第22-25页 |
| 1.4 脂质代谢与DPN | 第25-31页 |
| 1.4.1 神经系统中的脂质代谢 | 第25-27页 |
| 1.4.1.1 脂肪酸合成与分解 | 第25-26页 |
| 1.4.1.2 胆固醇和磷脂代谢 | 第26-27页 |
| 1.4.2 LXRs/SREBPs信号通路与脂质代谢 | 第27-29页 |
| 1.4.2.1 LXRs | 第27-28页 |
| 1.4.2.2 SREBPs | 第28-29页 |
| 1.4.3 脂质代谢与神经病变 | 第29-31页 |
| 第二部分 实验材料及方法 | 第31-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第31-32页 |
| 2.1.1 实验耗材 | 第31页 |
| 2.1.2 实验试剂和药品 | 第31-32页 |
| 2.1.3 抗体 | 第32页 |
| 2.1.4 实验仪器 | 第32页 |
| 2.2 实验方法 | 第32-39页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第32-33页 |
| 2.2.1.1 实验动物的饲养 | 第32-33页 |
| 2.2.1.2 实验动物的分组和糖尿病动物模型的建立 | 第33页 |
| 2.2.1.3 实验动物的给药处理 | 第33页 |
| 2.2.1.4 实验动物的样本收取 | 第33页 |
| 2.2.2 动物含药血清制 | 第33-34页 |
| 2.2.3 RSC96细胞系的培养 | 第34页 |
| 2.2.4 qRT-PCR (quantificational real-time polymerase chain reaction) | 第34-35页 |
| 2.2.5 Western blot | 第35-36页 |
| 2.2.6 免疫荧光染色 | 第36-37页 |
| 2.2.7 CCK8(cell counting kit-8)检测细胞存活情况 | 第37页 |
| 2.2.8 EdU试剂盒检测细胞增殖情况 | 第37-38页 |
| 2.2.9 透射电镜制样方法 | 第38-39页 |
| 第三部分 实验结果 | 第39-50页 |
| 3.1 DSD对糖尿病大鼠的作用 | 第39-46页 |
| 3.1.1 血糖和体重 | 第39-40页 |
| 3.1.2 表皮下末梢神经和坐骨神经的病理改变 | 第40-41页 |
| 3.1.3 坐骨神经中S100β的表达 | 第41-42页 |
| 3.1.4 坐骨神经中MBP的表达 | 第42-43页 |
| 3.1.5 坐骨神经中脂质代谢相关酶的表达 | 第43-44页 |
| 3.1.6 调控脂质合成的信号通路 | 第44-46页 |
| 3.2 DSD对大鼠施万细胞的影响 | 第46-50页 |
| 3.2.1 施万细胞增殖和存活能力 | 第46-48页 |
| 3.2.2 DSD对施万细胞脂质代谢相关酶的影响及可能机制 | 第48-50页 |
| 讨论 | 第50-54页 |
| 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
