| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-32页 |
| 1.1 骨髓基质细胞(Marrow stromal Cell,MSC) | 第13-18页 |
| 1.1.1 骨髓基质细胞的分离和培养 | 第13-14页 |
| 1.1.2 MSC的生物学特性 | 第14页 |
| 1.1.3 BMSC免疫调节特性 | 第14-15页 |
| 1.1.4 MSC的临床应用 | 第15-18页 |
| 1.2 造血干细胞(Hematopoietic stem cell,HSC) | 第18-25页 |
| 1.2.1 造血干细胞的发现 | 第18页 |
| 1.2.2 造血干细胞的表面标记 | 第18-19页 |
| 1.2.3 造血干细胞的来源 | 第19-20页 |
| 1.2.4 造血干细胞的移植 | 第20-21页 |
| 1.2.5 造血细胞因子 | 第21-22页 |
| 1.2.6 造血系统 | 第22-23页 |
| 1.2.7 信号通路对造血干细胞的调节作用 | 第23-25页 |
| 1.3 骨形态发生蛋白(Bone Morphogenetic Protein,BMP) | 第25-30页 |
| 1.3.1 BMP的性质 | 第25-26页 |
| 1.3.2 BMP的信号通路 | 第26页 |
| 1.3.3 BMP的诱骨活性 | 第26-27页 |
| 1.3.4 BMP在胚胎发生中的作用 | 第27-28页 |
| 1.3.5 BMP在造血系统中的作用 | 第28-29页 |
| 1.3.6 BMP对造血微环境的影响 | 第29页 |
| 1.3.7 BMP与细胞因子的关系 | 第29-30页 |
| 1.4 课题提出和主要研究内容 | 第30-32页 |
| 第二章 骨形态发生蛋白-2对急性化疗损伤小鼠骨髓造血功能恢复的促进作用 | 第32-49页 |
| 2.1 试剂与仪器 | 第33-34页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第33-34页 |
| 2.1.2 实验设备 | 第34页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第34页 |
| 2.2 实验方法 | 第34-38页 |
| 2.2.1 小鼠环磷酰胺化疗骨髓损伤模型的建立 | 第34页 |
| 2.2.2 实验分组 | 第34-35页 |
| 2.2.3 小鼠外周血白细胞检测 | 第35页 |
| 2.2.4 小鼠脾系数检测 | 第35页 |
| 2.2.5 股骨骨髓单核细胞数(bone marrow mononuclear cell,BMNC)检测 | 第35页 |
| 2.2.6 小鼠骨髓细胞中CD34~+细胞和CD45~+细胞比例的变化 | 第35页 |
| 2.2.7 粒系-巨系细胞集落(CFU-GM)形成的测定 | 第35页 |
| 2.2.8 小鼠细胞周期的测定 | 第35-36页 |
| 2.2.9 荧光定量PCR检测CD34和CD45分子的基因表达 | 第36-37页 |
| 2.2.10 统计学处理 | 第37-38页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第38-48页 |
| 2.3.1 rhBMP-2对CTX化疗损伤小鼠外周血白细胞的影响 | 第38-39页 |
| 2.3.2 rhBMP-2对CTX化疗损伤小鼠脾系数的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.3 rhBMP-2对CTX化疗损伤小鼠骨髓单核细胞数(BMNC)的影响 | 第40-41页 |
| 2.3.4 rhBMP-2对CTX化疗损伤小鼠骨髓单核细胞中CD34~+细胞和CD45~+细胞含量的影响 | 第41-43页 |
| 2.3.5 rhBMP-2对CTX化疗损伤小鼠骨髓细胞CD34~+和CD45~+基因表达的影响 | 第43-45页 |
| 2.3.6 rhBMP-2对CTX化疗损伤小鼠CFU-GM数的影响 | 第45-47页 |
| 2.3.7 rhBMP-2对化疗损伤小鼠细胞周期的影响 | 第47-48页 |
| 2.4 小结 | 第48-49页 |
| 第三章 骨形态发生蛋白-2对急性辐射损伤小鼠造血功能恢复的促进作用 | 第49-62页 |
| 3.1 主要试剂与仪器 | 第49-50页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第49-50页 |
| 3.1.2 主要设备 | 第50页 |
| 3.1.3 实验动物 | 第50页 |
| 3.2 实验方法 | 第50-53页 |
| 3.2.1 辐照动物模型的建立 | 第50页 |
| 3.2.2 实验分组 | 第50页 |
| 3.2.3 小鼠外周血白细胞检测 | 第50页 |
| 3.2.4 小鼠脾系数检测 | 第50-51页 |
| 3.2.5 股骨骨髓单核细胞数(bone marrow mononuclear cell,BMNC)检测 | 第51页 |
| 3.2.6 小鼠骨髓细胞中CD34~+细胞和CD45~+细胞比例的变化 | 第51页 |
| 3.2.7 粒系-巨系细胞集落(CFU-GM)形成的测定 | 第51页 |
| 3.2.8 荧光定量PCR仪器检测CD34和CD45分子的基因表达 | 第51-52页 |
| 3.2.9 统计学处理 | 第52-53页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第53-61页 |
| 3.3.1 rhBMP-2对急性辐射损伤小鼠外周血白细胞的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.2 rhBMP-2对辐射损伤小鼠骨髓单核细胞数的影响 | 第54-55页 |
| 3.3.3 rhBMP-2对辐射损伤小鼠粒系-巨系细胞集落(CFU-GM)数的影响 | 第55-56页 |
| 3.3.4 rhBMP-2对辐射损伤小鼠脾系数的作用 | 第56-57页 |
| 3.3.5 rhBMP-2对辐射损伤小鼠骨髓单核细胞中CD34~+细胞和CD45~+细胞含量的影响 | 第57-59页 |
| 3.3.6 rhBMP-2对辐射损伤损伤小鼠CD34细胞和CD45细胞基因表达的影响 | 第59-61页 |
| 3.4 小结 | 第61-62页 |
| 第四章 骨形态发生蛋白-2对再生障碍性贫血小鼠骨髓造血恢复的促进作用 | 第62-71页 |
| 4.1 主要试剂和仪器 | 第62-63页 |
| 4.1.1 主要试剂 | 第62-63页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第63页 |
| 4.1.3 实验动物 | 第63页 |
| 4.2 实验方法 | 第63-64页 |
| 4.2.1 再生障碍性贫血动物模型的建立 | 第63页 |
| 4.2.2 实验分组 | 第63页 |
| 4.2.3 外周血白细胞的检测 | 第63页 |
| 4.2.4 脾系数的检测 | 第63-64页 |
| 4.2.5 股骨骨髓单核细胞数(bone marrow mononuclear cell,BMNC)检测 | 第64页 |
| 4.2.6 粒系-巨系细胞集落(CFU-GM)形成测定 | 第64页 |
| 4.2.7 小鼠骨髓细胞中CD34~+细胞和CD45~+细胞比例的变化 | 第64页 |
| 4.2.8 小鼠脾脏和股骨组织形态学观察 | 第64页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第64-70页 |
| 4.3.1 rhBMP-2对再生障碍性贫血小鼠小鼠体重、存活率和外周血白细胞的影响 | 第64-65页 |
| 4.3.2 rhBMP-2对再生障碍性贫血小鼠骨髓单核细胞数的影响 | 第65-66页 |
| 4.3.3 rhBMP-2对再生障碍性贫血小鼠的骨髓细胞体外CFU-GM的影响 | 第66-67页 |
| 4.3.4 rhBMP-2对再生障碍性贫血小鼠的脾系数的影响 | 第67-68页 |
| 4.3.5 实验组小鼠股骨和脾脏的组织形态学评价 | 第68-69页 |
| 4.3.6 rhBMP-2对再生障碍性贫血小鼠骨髓单核细胞中CD34~+细胞含量的影响 | 第69-70页 |
| 4.4 小结 | 第70-71页 |
| 第五章 全文总结 | 第71-74页 |
| 5.1 全文主要结论 | 第71-73页 |
| 5.2 特色与创新 | 第73页 |
| 5.3 研究展望 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 硕士在读期间研究成果 | 第86页 |
