| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 术语及略缩语表 | 第7-10页 |
| 1 引言 | 第10-16页 |
| 1.1 马铃薯晚疫病 | 第10页 |
| 1.2 化学防治及农药残留 | 第10-11页 |
| 1.3 吡唑醚菌酯 | 第11-12页 |
| 1.3.1 理化性质 | 第11-12页 |
| 1.3.2 作用机理 | 第12页 |
| 1.3.3 制剂 | 第12页 |
| 1.4 吡唑醚菌酯的残留分析方法 | 第12-14页 |
| 1.4.1 前处理方法 | 第12-13页 |
| 1.4.2 分析检测方法 | 第13-14页 |
| 1.5 吡唑醚菌酯消解动态研究 | 第14-15页 |
| 1.6 研究的目的和意义 | 第15-16页 |
| 2 材料与方法 | 第16-21页 |
| 2.1 试验材料 | 第16页 |
| 2.1.1 农药标准品与试剂 | 第16页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第16页 |
| 2.2 吡唑醚菌酯残留分析方法的建立 | 第16-18页 |
| 2.2.1 标准溶液的配置 | 第16-17页 |
| 2.2.2 色谱条件 | 第17页 |
| 2.2.3 质谱条件 | 第17页 |
| 2.2.4 样品前处理 | 第17-18页 |
| 2.2.5 方法的准确度和精确度 | 第18页 |
| 2.3 1%吡唑醚菌酯颗粒剂在马铃薯和土壤中的残留 | 第18-21页 |
| 2.3.1 田间试验 | 第18-20页 |
| 2.3.2 样品的采集和制备 | 第20页 |
| 2.3.3 气候条件及土壤类型 | 第20-21页 |
| 3 结果与分析 | 第21-37页 |
| 3.1 色谱条件的优化 | 第21-23页 |
| 3.1.1 最佳流动相的选择 | 第21-22页 |
| 3.1.2 最佳流速的选择 | 第22-23页 |
| 3.2 质谱条件的优化 | 第23-24页 |
| 3.3 标准曲线 | 第24-25页 |
| 3.4 提取条件的优化 | 第25-29页 |
| 3.4.1 提取溶剂的选择 | 第25-26页 |
| 3.4.2 提取方式的选择 | 第26-28页 |
| 3.4.3 提取时间的选择 | 第28-29页 |
| 3.5 净化条件的优化 | 第29-31页 |
| 3.6 方法的灵敏度、准确度和精密度 | 第31-34页 |
| 3.7 吡唑醚菌酯在土壤和马铃薯植株中的消解动态 | 第34-36页 |
| 3.8 吡唑醚菌酯在土壤和马铃薯块茎中的最终残留量 | 第36-37页 |
| 4 讨论 | 第37-39页 |
| 5 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-45页 |
| 作者简历 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 详细摘要 | 第47-48页 |