摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-7页 |
引言 | 第13-21页 |
0.1 课题来源、背景及研究目的和意义 | 第13-14页 |
0.1.1 课题来源 | 第13页 |
0.1.2 课题背景 | 第13页 |
0.1.3 课题研究的目的和意义 | 第13-14页 |
0.2 农作物秸秆资源的利用现状 | 第14-16页 |
0.2.1 秸秆的组成及性质 | 第14-15页 |
0.2.2 秸秆的利用方式 | 第15-16页 |
0.3 纤维素降解微生物的研究进展 | 第16-19页 |
0.3.1 纤维素降解微生物的研究进展 | 第16-17页 |
0.3.2 降解纤维素的复合菌系的研究进展 | 第17-19页 |
0.4 筛选方法的研究进展 | 第19-20页 |
0.4.1 滤纸为碳源的选择性培养基 | 第19页 |
0.4.2 羧甲基纤维素钠(CMC-Na)刚果红平板筛选 | 第19-20页 |
0.4.3 高通量 | 第20页 |
0.5 主要研究内容 | 第20-21页 |
第1章 实验材料与方法 | 第21-33页 |
1.1 实验材料 | 第21-24页 |
1.1.1 样品采集 | 第21页 |
1.1.2 实验试剂 | 第21-23页 |
1.1.3 培养基 | 第23页 |
1.1.4 主要仪器设备 | 第23-24页 |
1.2 实验方法 | 第24-28页 |
1.2.1 培养基的配制 | 第24页 |
1.2.2 纤维素降解菌的高通量筛选及鉴定 | 第24-25页 |
1.2.3 纤维素降解微生物的鉴定 | 第25-26页 |
1.2.4 C-7的产酶效能研究 | 第26-27页 |
1.2.5 厌氧纤维素复合菌系的筛选 | 第27页 |
1.2.6 复合菌系H1的性能研究 | 第27-28页 |
1.3 分析方法 | 第28-33页 |
1.3.1 纤维素降解率测定 | 第28-29页 |
1.3.2 纤维素酶活测定 | 第29-30页 |
1.3.3 发酵产物的测定 | 第30-31页 |
1.3.4 纤维素降解菌系中微生物群落结构分析 | 第31-33页 |
第2章 高通量纤维素降解菌筛选平台构建 | 第33-44页 |
2.1 引言 | 第33页 |
2.2 目标菌源的筛选 | 第33-38页 |
2.2.1 样品来源 | 第33-34页 |
2.2.2 高通量测序 | 第34-37页 |
2.2.3 限制性培养 | 第37-38页 |
2.3 高通量筛选方法的建立 | 第38-43页 |
2.3.1 微量培养方法的建立 | 第38-40页 |
2.3.2 微量检测方法的建立 | 第40-43页 |
2.4 本章小结 | 第43-44页 |
第3章 高通量平台对纤维素纯菌筛选的应用研究 | 第44-52页 |
3.1 引言 | 第44页 |
3.2 纤维素降解菌的分离 | 第44-46页 |
3.3 纤维素降解菌的鉴定 | 第46-48页 |
3.4 产酶效能研究 | 第48-50页 |
3.4.1 培养时间对C-7产纤维素酶的影响 | 第48-49页 |
3.4.2 培养温度对C-7产纤维素酶的影响 | 第49页 |
3.4.3 培养初始pH值对C-7产纤维素酶的影响 | 第49-50页 |
3.5 本章小结 | 第50-52页 |
第4章 降解纤维素复合菌系的筛选及在秸秆降解上的应用研究 | 第52-64页 |
4.1 引言 | 第52页 |
4.2 复合菌系H1的筛选与驯化 | 第52-54页 |
4.3 复合菌系的降解特性研究 | 第54-55页 |
4.3.1 连续继代培养下H1发酵液功能的稳定性 | 第54-55页 |
4.4 复合菌系的生理生化特性 | 第55-61页 |
4.4.1 分解过程研究 | 第55-57页 |
4.4.2 H1对秸秆纤维素的降解性能 | 第57-58页 |
4.4.3 H1对不同底物的分解产物研究 | 第58-61页 |
4.5 复合菌系的群落结构分析 | 第61-63页 |
4.6 本章小结 | 第63-64页 |
第5章 结论与展望 | 第64-66页 |
5.1 结论 | 第64-65页 |
5.2 展望 | 第65-66页 |
致谢 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-72页 |
附录 | 第72-74页 |
攻读学位期间发表的学术论文及参加科研情况 | 第74-75页 |