| 中文摘要 | 第6-10页 |
| Abstract | 第10-14页 |
| 第一章 前言 | 第17-21页 |
| 第二章 神经胶质瘤组织与细胞的Nexilin表达 | 第21-35页 |
| 2.1 研究对象与方法 | 第22-28页 |
| 2.1.1 研究对象与细胞系 | 第22页 |
| 2.1.2 主要试剂与耗材 | 第22页 |
| 2.1.3 主要仪器与设备 | 第22-23页 |
| 2.1.4 方法 | 第23-28页 |
| 2.2 结果 | 第28-32页 |
| 2.2.1 Nexilin在神经胶质瘤组织的染色结果 | 第28-30页 |
| 2.2.2 Nexilin在神经胶质瘤组织的表达变化 | 第30-31页 |
| 2.2.3 不同级别胶质瘤组织Nexilin的表达 | 第31页 |
| 2.2.4 年龄性别与胶质瘤Nexilin表达的关系 | 第31页 |
| 2.2.5 各病理组织类型胶质瘤Nexilin表达 | 第31页 |
| 2.2.6 Nexilin在神经胶质瘤组织的表达(Western blot)结果 | 第31-32页 |
| 2.2.7 神经胶质瘤细胞系Nexilin表达 | 第32页 |
| 2.3 讨论 | 第32-34页 |
| 2.4 本章小结 | 第34-35页 |
| 第三章 靶向Nexilin基因干扰载体的构建和筛选 | 第35-47页 |
| 3.1 材料与方法 | 第36-42页 |
| 3.1.1 材料 | 第36-38页 |
| 3.1.2 方法 | 第38-42页 |
| 3.2 结果 | 第42-44页 |
| 3.2.1 Nexilin基因干扰载体的合成与测序结果 | 第42-44页 |
| 3.2.2 绿色荧光蛋白EmGPF表达结果 | 第44页 |
| 3.2.3 Western blot检测转染Nexilin shRNA质粒后Nexilin表达结果 | 第44页 |
| 3.3 讨论 | 第44-46页 |
| 3.4 本章小结 | 第46-47页 |
| 第四章 Nexilin下调对神经胶质瘤生长、迁移、侵袭、粘附的影响 | 第47-59页 |
| 4.1 材料 | 第47-53页 |
| 4.1.1 细胞株 | 第47页 |
| 4.1.2 主要试剂与耗材 | 第47-48页 |
| 4.1.3 主要仪器与设备 | 第48页 |
| 4.1.4 方法 | 第48-53页 |
| 4.2 结果 | 第53-57页 |
| 4.2.1 Nexilin shRNA转染A172、U87细胞Nexilin蛋白的表达 | 第53页 |
| 4.2.2 免疫荧光法检测胶质瘤细胞F-actin、Nexilin的变化 | 第53-54页 |
| 4.2.3 MTT法检测胶质瘤细胞生长活力 | 第54页 |
| 4.2.4 Transwell法检测胶质瘤细胞迁移实验 | 第54-55页 |
| 4.2.5 Transwell法检测胶质瘤细胞侵袭实验 | 第55-56页 |
| 4.2.6 胶质瘤细胞粘附实验结果 | 第56-57页 |
| 4.3 讨论 | 第57-58页 |
| 4.4 本章小结 | 第58-59页 |
| 第五章 Nexilin表达下调对HGF诱导的胶质瘤细胞迁移和侵袭的影响 | 第59-76页 |
| 5.1 材料与方法 | 第60-63页 |
| 5.1.1 细胞株 | 第60页 |
| 5.1.2 主要试剂与耗材 | 第60-61页 |
| 5.1.3 主要仪器与设备 | 第61页 |
| 5.1.4 方法 | 第61-63页 |
| 5.2 结果 | 第63-72页 |
| 5.2.1 HGF诱导的胶质瘤U87细胞Nexilin表达结果 | 第63-65页 |
| 5.2.2 Nexilin shRNA转染U87细胞Nexilin蛋白表达结果 | 第65-66页 |
| 5.2.3 Nexilin shRNA对HGF处理的U251、U87细胞划痕实验的影响 | 第66-68页 |
| 5.2.4 胶质瘤细胞Nexilin蛋白表达与划痕长度相关性分析 | 第68页 |
| 5.2.5 Nexilin shRNA对HGF诱导胶质瘤U251、U87细胞侵袭的影响 | 第68-71页 |
| 5.2.6 Nexilin shRNA对HGF诱导胶质瘤U251、U87细胞下游信号通路的影响 | 第71-72页 |
| 5.3 讨论 | 第72-75页 |
| 5.4 本章小结 | 第75-76页 |
| 第六章 结论 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-89页 |
| 综述 | 第89-111页 |
| 参考文献 | 第99-111页 |
| 附录 | 第111页 |
