摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
绪论 | 第13-22页 |
1.1 引言 | 第13-14页 |
1.2 PAMAM树状大分子作为药物载体的研究进展 | 第14-18页 |
1.2.1 树状大分子的研究进展 | 第14-15页 |
1.2.2 PAMAM作为靶向药物载体的优势 | 第15-16页 |
1.2.3 PAMAM在脑靶向递药系统的应用研究 | 第16-18页 |
1.3 丹参酮IIA的研究进展 | 第18-19页 |
1.4 脑靶向纳米递药系统的研究进展 | 第19-20页 |
1.4.1 脑靶向纳米递药系统的简介 | 第19页 |
1.4.2 脑靶向递药系统中载体材料的分类 | 第19-20页 |
1.5 本论文的研究内容及意义 | 第20-22页 |
1.5.1 论文研究的意义 | 第20-21页 |
1.5.2 论文研究的内容 | 第21-22页 |
第2章 PEG-PAMAM的制备与表征 | 第22-31页 |
2.1 实验仪器及试剂 | 第22-23页 |
2.2 5.0G PAMAM的合成 | 第23-24页 |
2.2.1 5.0G PAMAM的合成路线 | 第23-24页 |
2.2.2 半代PAMAM树状大分子的合成 | 第24页 |
2.2.3 整代PAMAM树状大分子的合成 | 第24页 |
2.3 PEG-PAMAM的制备 | 第24页 |
2.4 5.0G PAMAM和PEG-PAMAM的表征 | 第24-25页 |
2.4.1 红外光谱(FTIR)的表征 | 第24-25页 |
2.4.2 核磁氢谱(~1H-NMR)表征 | 第25页 |
2.4.3 核磁碳谱(~(13)C-NMR)表征 | 第25页 |
2.5 结果分析 | 第25-30页 |
2.5.1 5.0G PAMAM红外光谱(FTIR)的分析 | 第25-26页 |
2.5.2 5.0G PAMAM核磁氢谱(~1H-NMR)的分析 | 第26-27页 |
2.5.3 5.0G PAMAM核磁碳谱(~(13)C-NMR)分析 | 第27-28页 |
2.5.4 PEG-PAMAM红外光谱(FTIR)的分析 | 第28页 |
2.5.5 PEG-PAMAM核磁氢谱(~1H-NMR)分析 | 第28-29页 |
2.5.6 PEG-PAMAM核磁碳谱(~(13)C-NMR)分析 | 第29-30页 |
2.6 本章小结 | 第30-31页 |
第3章 T7-PEG-PAMAM载体的制备与表征以及脑靶向性研究 | 第31-39页 |
3.1 引言 | 第31页 |
3.2 实验仪器及试剂 | 第31-32页 |
3.3 T7-PEG-PAMAM载体的制备 | 第32-33页 |
3.4 Di R荧光染料标记纳米复合物的制备 | 第33页 |
3.5 ICR小鼠活体荧光成像体内分布实验 | 第33页 |
3.6 T7-PEG-PAMAM的表征 | 第33-34页 |
3.6.1 核磁氢谱分析 | 第33页 |
3.6.2 扫描电镜(SEM)表征 | 第33-34页 |
3.6.3 纳米粒径和Zeta电位测定 | 第34页 |
3.7 结果分析 | 第34-38页 |
3.7.1 核磁碳谱(1H-NMR)分析 | 第34-35页 |
3.7.2 扫描电镜分析 | 第35页 |
3.7.3 纳米粒径分析 | 第35-36页 |
3.7.4 电位分析 | 第36-37页 |
3.7.5 小鼠体内Di R荧光分布实验结果分析 | 第37-38页 |
3.8 本章小结 | 第38-39页 |
第4章 T7-PEG-PAMAM/TSIIA纳米递药系统的制备与体外释药的研究 | 第39-47页 |
4.1 引言 | 第39页 |
4.2 实验仪器及试剂 | 第39-40页 |
4.3 T7-PEG-PAMAM/TSIIA纳米载药系统的制备 | 第40页 |
4.4 载药量和包封率的测定 | 第40-41页 |
4.5 体外药物释放研究 | 第41页 |
4.6 HPLC法测定TSIIA含量方法的建立 | 第41-42页 |
4.6.1 色谱条件 | 第41页 |
4.6.2 标准曲线的绘制 | 第41-42页 |
4.7 HPLC分析的方法学考察 | 第42-44页 |
4.7.1 专属性实验 | 第42-43页 |
4.7.2 精密度实验 | 第43-44页 |
4.7.3 回收率实验 | 第44页 |
4.8 结果分析 | 第44-46页 |
4.8.1 载药量和包封率的测定 | 第44-45页 |
4.8.2 体外释放药物结果分析 | 第45-46页 |
4.9 本章小结 | 第46-47页 |
第5章 T7-PEG-PAMAM/TSIIA纳米递药系统对大鼠脑缺血再灌注损伤保护机制的研究 | 第47-58页 |
5.1 引言 | 第47页 |
5.2 实验仪器及试剂 | 第47-48页 |
5.3 大鼠脑缺血再灌注损伤模型的建立 | 第48-49页 |
5.4 实验动物分组和成模标准 | 第49页 |
5.5 神经行为功能评分 | 第49-50页 |
5.6 脑梗死面积的测量 | 第50页 |
5.7 脑组织中生物指标的测定 | 第50-51页 |
5.7.1 样品的制备 | 第50页 |
5.7.2 SOD活力的测定 | 第50页 |
5.7.3 NO含量的测定 | 第50页 |
5.7.4 Na~+-K~+-ATP酶活力的测定 | 第50-51页 |
5.7.5 GSH-Px活力的测定 | 第51页 |
5.7.6 LDH活力的测定 | 第51页 |
5.8 数据统计 | 第51页 |
5.9 结果分析 | 第51-57页 |
5.9.1 T7-PEG-PAMAM/TSIIA对神经功能的影响结果分析 | 第51-52页 |
5.9.2 对脑梗死面积的影响 | 第52-54页 |
5.9.3 对缺血再灌注损伤大鼠脑组织中SOD、NO、LDH的影响 | 第54-55页 |
5.9.4 对缺血再灌注损伤大鼠脑组织中GSH、Na~+-K~+-ATP的影响 | 第55-57页 |
5.10 本章小结 | 第57-58页 |
结论 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-65页 |
攻读硕士学位期间的学术成果 | 第65-66页 |
致谢 | 第66页 |