缩略词(Abbreviations) | 第6-8页 |
摘要 | 第8-9页 |
Summary | 第9-10页 |
引言 | 第11-13页 |
第一部分 文献综述 | 第13-47页 |
第一章 镉的神经毒性及白藜芦醇的神经保护性作用 | 第14-24页 |
1 镉的来源及其理化性质 | 第14页 |
2 镉的神经毒性作用 | 第14-16页 |
3 白藜芦醇的理化性质 | 第16页 |
4 白藜芦醇的神经性保护作用 | 第16-17页 |
5 小结 | 第17页 |
参考文献 | 第17-24页 |
第二章 NOX家族和ROS产生及与神经变性疾病的关系 | 第24-34页 |
1 NOX家族 | 第24-25页 |
2 ROS的产生、种类及对生物细胞的影响 | 第25-26页 |
2.1 ROS的产生和种类 | 第25-26页 |
2.2 ROS对生物细胞的影响 | 第26页 |
3 NOX家族和ROS关系及其与神经变性疾病的关系 | 第26-27页 |
4 小结 | 第27页 |
参考文献 | 第27-34页 |
第三章 Akt-Erk1/2信号通路作用与凋亡发生的关系 | 第34-47页 |
1 Akt-Erk1/2信号通路 | 第34-36页 |
1.1 Akt的分子结构及与凋亡的关系 | 第34-35页 |
1.2 Erk1/2的分子结构及与凋亡的关系 | 第35-36页 |
2 神经细胞Akt-Erk1/2信号通路与凋亡的关系 | 第36-37页 |
3 小结 | 第37页 |
参考文献 | 第37-47页 |
第二部分 实验部分 | 第47-65页 |
第四章 白藜芦醇抑制镉诱导神经细胞NOX2依赖的ROS抗凋亡机理研究 | 第48-58页 |
1 材料与方法 | 第49-52页 |
1.1 主要药品与试剂 | 第49页 |
1.2 PC12细胞培养 | 第49页 |
1.3 实验小鼠大脑皮质原代神经元的分离和培养 | 第49-50页 |
1.4 DAPI、TUNEL染色分析 | 第50页 |
1.5 细胞内ROS分析 | 第50-51页 |
1.6 免疫荧光染色 | 第51页 |
1.7 Caspase-3/7活性 | 第51页 |
1.8 免疫印迹(Western blot)分析 | 第51-52页 |
1.9 数据统计分析 | 第52页 |
2 结果 | 第52-54页 |
2.1 白藜芦醇抑制镉诱导神经细胞NOX2表达和细胞凋亡 | 第52-53页 |
2.2 NAC强化白藜芦醇抑制镉诱导神经细胞ROS产生和凋亡 | 第53-54页 |
3 讨论 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-58页 |
第五章 白藜芦醇通过NOX2-ROS介导Akt-Erk1/2通路抗镉诱导 | 第58-65页 |
1 材料与方法 | 第59-60页 |
1.1 主要药品与试剂 | 第59页 |
1.2 PC12细胞培养 | 第59页 |
1.3 实验小鼠大脑皮质原代神经元的分离和培养 | 第59页 |
1.4 腺病毒构建和感染细胞 | 第59页 |
1.5 台盼蓝染色分析活细胞比率 | 第59-60页 |
1.6 TUNEL染色分析 | 第60页 |
1.7 细胞内ROS及成像分析 | 第60页 |
1.8 免疫印迹(Western blot)分析 | 第60页 |
1.9 数据统计分析 | 第60页 |
2 结果 | 第60-63页 |
2.1 白藜芦醇调控Akt-Erk信号通路抗镉诱导神经细胞凋亡 | 第60-62页 |
2.2 白藜芦醇通过NOX2-ROS依赖的Akt-Erk通路抗镉诱导神经细胞凋亡 | 第62-63页 |
3 讨论 | 第63页 |
参考文献 | 第63-65页 |
第三部分 全文结论全文结论 | 第65-67页 |
全文结论 | 第66-67页 |
附1 | 第67-68页 |
致谢 | 第68-69页 |