| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-16页 |
| 1.1 课题研究背景 | 第10-11页 |
| 1.1.1 偶氮染料及偶氮还原酶简介 | 第10页 |
| 1.1.2 偶氮染料降解方法的介绍 | 第10-11页 |
| 1.2 偶氮还原酶的研究现状 | 第11-13页 |
| 1.3 光谱学和THz检测方法研究 | 第13-14页 |
| 1.3.12D光谱检测方法研究概述 | 第13-14页 |
| 1.3.2 THz检测方法研究概述 | 第14页 |
| 1.4 理论依据及研究内容 | 第14-16页 |
| 第二章 AzoR及R59G突变体的诱导表达、纯化、FMN含量测定以及酶促反应动力学的研究 | 第16-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第16页 |
| 2.2 实验仪器和设备 | 第16页 |
| 2.3 实验试剂及配制方法 | 第16-19页 |
| 2.4 实验方法 | 第19-24页 |
| 2.4.1 AzoR及其R59G突变体的诱导表达及纯化 | 第19-22页 |
| 2.4.2 大肠杆菌表达的AzoR中FMN含量的测定 | 第22-24页 |
| 2.5 实验结果 | 第24-29页 |
| 2.5.1 AzoR及其R59G突变体的诱导表达及纯化 | 第24-25页 |
| 2.5.2 AzoR及其R59G突变体中FMN的含量测定 | 第25-27页 |
| 2.5.3 R59G突变对AzoR中FMN光谱学行为的影响 | 第27-28页 |
| 2.5.4 R59G突变体对AzoR及其R59G突变体比酶活的影响 | 第28-29页 |
| 2.6 本章小结与讨论 | 第29-30页 |
| 第三章 运用 2D及偏振荧光手段分析稀释对AzoR二聚体的影响213.1 实验材料 | 第30-38页 |
| 3.1 实验材料 | 第30页 |
| 3.2 实验仪器和设备 | 第30页 |
| 3.3 实验试剂及配制方法 | 第30页 |
| 3.4 实验方法及步骤 | 第30-31页 |
| 3.4.1 常规荧光光谱检测 | 第31页 |
| 3.4.2 二维光谱的处理 | 第31页 |
| 3.4.3 偏振荧光光谱检测 | 第31页 |
| 3.5 实验结果 | 第31-36页 |
| 3.5.1 稀释诱导的荧光光谱的变化 | 第31-33页 |
| 3.5.2 稀释诱导的 2D荧光光谱变化 | 第33-35页 |
| 3.5.3 稀释诱导的偏振荧光光谱变化 | 第35-36页 |
| 3.6 本章小结与讨论 | 第36-38页 |
| 第四章 运用光谱学和THz手段研究酶和底物的结合作用力 | 第38-44页 |
| 4.1 实验材料 | 第38页 |
| 4.2 实验仪器和设备 | 第38页 |
| 4.3 实验试剂及其配制 | 第38页 |
| 4.4 实验方法与步骤 | 第38-39页 |
| 4.4.1 运用THz手段研究底物与酶的结合 | 第38-39页 |
| 4.4.2 运用光谱学方法检测底物与酶的结合 | 第39页 |
| 4.5 实验结果 | 第39-43页 |
| 4.5.1 THz方法检测的底物与酶之间的作用力 | 第39-40页 |
| 4.5.2 光谱学手段检测的底物与酶之间的作用 | 第40-43页 |
| 4.6 本章小结与讨论 | 第43-44页 |
| 第五章 运用荧光光谱学手段研究AzoR的有机溶剂耐受性及光谱学研究 | 第44-52页 |
| 5.1 实验材料 | 第44页 |
| 5.2 实验仪器及设备 | 第44页 |
| 5.3 实验试剂及其配制方法 | 第44页 |
| 5.4 实验方法与步骤 | 第44-45页 |
| 5.4.1 检测AzoR在DMSO处理后的酶活 | 第44-45页 |
| 5.4.2 检测AzoR在乙醇处理后的酶活 | 第45页 |
| 5.4.3 荧光光谱检测 | 第45页 |
| 5.5 实验结果 | 第45-50页 |
| 5.5.1 AzoR在DMSO中的酶活及光谱学检测 | 第45-49页 |
| 5.5.2 AzoR在乙醇中的酶活及光谱学检测 | 第49-50页 |
| 5.6 本章小结与讨论 | 第50-52页 |
| 第六章 总结 | 第52-54页 |
| 6.1 本文总结及相关创新 | 第52页 |
| 6.2 展望 | 第52-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 相关研究成果 | 第59-60页 |
