摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第1章 绪论 | 第11-27页 |
1.1 肼的简介及目前存在的检测方法 | 第11-12页 |
1.2 荧光分子探针 | 第12-13页 |
1.3 荧光分子探针的识别机理 | 第13-16页 |
1.3.1 分子内电荷转移(ICT) | 第13-14页 |
1.3.2 激发态分子内质子转移(ESIPT) | 第14-16页 |
1.4 肼检测的荧光分子探针 | 第16-24页 |
1.4.1 基于亲核取代类反应的肼检测探针 | 第17-20页 |
1.4.2 基于席夫碱反应的肼检测探针 | 第20-22页 |
1.4.3 基于Gabriel反应的肼检测探针 | 第22-24页 |
1.5 本课题的研究背景、意义与研究内容 | 第24-27页 |
第2章 荧光探针的合成与性能 | 第27-45页 |
2.1 引言 | 第27-28页 |
2.2 实验部分 | 第28-33页 |
2.2.1 原料与试剂 | 第28页 |
2.2.2 测试与仪器 | 第28-30页 |
2.2.3 探针的合成与制备 | 第30-33页 |
2.3 结果与讨论 | 第33-44页 |
2.3.1 探针HBTA-N_2H_4 和中间化合物的结构表征 | 第33-36页 |
2.3.2 探针NA-N_2H_4 和中间化合物的结构表征 | 第36-40页 |
2.3.3 NA-N_2H_4 和HBTA-N_2H_4 的UV-vis吸收光谱和荧光光谱 | 第40页 |
2.3.4 测试体系的水含量对NA-N_2H_4 和HBTA-N_2H_4 荧光光谱的影响 | 第40-44页 |
2.3.5 NA-N_2H_4 的荧光量子产率 | 第44页 |
2.4 本章小结 | 第44-45页 |
第3章NA-N_2H_4 荧光探针对肼的检测 | 第45-69页 |
3.1 引言 | 第45-46页 |
3.2 实验部分 | 第46-53页 |
3.2.1 原料与试剂 | 第46-47页 |
3.2.2 测试及仪器 | 第47页 |
3.2.3 光谱学性质测试 | 第47-50页 |
3.2.4 细胞毒性测试 | 第50页 |
3.2.5 细胞培养和荧光成像 | 第50-51页 |
3.2.6 斑马鱼培养和荧光成像 | 第51-53页 |
3.3 结果与讨论 | 第53-68页 |
3.3.1 吸收光谱分析 | 第53-54页 |
3.3.2 荧光光谱分析 | 第54-57页 |
3.3.3 NA-N_2H_4 对肼的时间响应曲线 | 第57-58页 |
3.3.4 NA-N_2H_4 对肼的选择性和抗干扰性实验分析 | 第58-59页 |
3.3.5 NA-N_2H_4 检测肼的机理验证 | 第59-61页 |
3.3.6 NA-N_2H_4 在不同pH环境下的稳定性 | 第61-62页 |
3.3.7 实际水样中NA-N_2H_4 对肼的含量测定 | 第62-63页 |
3.3.8 NA-N_2H_4 对气态肼的检测 | 第63-64页 |
3.3.9 细胞毒性分析 | 第64-65页 |
3.3.10 活细胞内NA-N_2H_4 对肼的荧光成像 | 第65-66页 |
3.3.11 活体内NA-N_2H_4 对肼的荧光成像 | 第66-68页 |
3.4 本章小结 | 第68-69页 |
结论 | 第69-70页 |
参考文献 | 第70-79页 |
附录 1:部分合成产物的质谱图 | 第79-81页 |
攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第81-82页 |
致谢 | 第82-83页 |
附件 | 第83页 |