摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
英文缩略语 | 第8-11页 |
1 前言 | 第11-13页 |
2 材料与方法 | 第13-21页 |
2.1 主要试剂和仪器 | 第13-14页 |
2.1.1 主要试剂 | 第13页 |
2.1.2 主要仪器 | 第13-14页 |
2.2 研究对象和方法 | 第14-20页 |
2.2.1 研究对象 | 第14页 |
2.2.2 实验分组 | 第14页 |
2.2.3 动物慢性不可预知刺激模型建立 | 第14-15页 |
2.2.4 动物手术模型建立 | 第15页 |
2.2.5 样品采集与制备 | 第15-16页 |
2.2.6 动物行为学的检测 | 第16页 |
2.2.7 Western Blot印迹检测海马区炎性因子和BDNF的表达 | 第16-17页 |
2.2.8 免疫组化法检测大鼠海马区小胶质细胞标记物Iba-1的表达 | 第17-18页 |
2.2.9 Real-time PCR检测CD200mRNA、Arg1 mRNA的表达水平 | 第18-20页 |
2.2.10 酶联反应吸附测定(ELISA)法测量大鼠血浆中GCs水平 | 第20页 |
2.3 统计学处理? | 第20-21页 |
3 结果 | 第21-29页 |
3.1 CUS引起大鼠体重下降 | 第21页 |
3.2 CUS加重手术创伤引起的大鼠病理行为反应 | 第21-23页 |
3.2.1 旷场实验中CUS加重大鼠术后病理行为反应 | 第21-22页 |
3.2.2 高架十字迷宫实验中CUS加重大鼠术后焦虑水平 | 第22-23页 |
3.3 CUS加重大鼠手术创伤引起的海马区神经炎症反应 | 第23-25页 |
3.4 CUS使大鼠手术创伤引起的M1型小胶质细胞激活标记物Iba-1表达升高,使M2型小胶质细胞标记物Arg1 mRNA水平降低 | 第25-26页 |
3.4.1 免疫组化实验检测大鼠海马区Iba-1表达水平 | 第25-26页 |
3.4.2 Real-time PCR实验检测大鼠海马区M2型小胶质细胞标记物Arg1 mRNA表达水平 | 第26页 |
3.5 CUS加重大鼠手术创伤引起的CD200mRNA水平降低 | 第26-27页 |
3.6 CUS加重大鼠手术创伤引起的海马区BDNF表达降低 | 第27-28页 |
3.7 CUS引起大鼠血浆内糖皮质激素水平升高 | 第28-29页 |
4 讨论 | 第29-33页 |
5 结论 | 第33-34页 |
本研究创新性的自我评价 | 第34-35页 |
参考文献 | 第35-40页 |
综述 术后认知功能障碍研究进展 | 第40-47页 |
参考文献 | 第43-47页 |
在学期间科研成绩 | 第47-48页 |
致谢 | 第48-49页 |
个人简历 | 第49页 |