| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1. 前言 | 第10-24页 |
| 1.1 幽门螺杆菌的危害及现阶段治疗方法的局限 | 第10-12页 |
| 1.1.1 幽门螺杆菌简介 | 第10-11页 |
| 1.1.2 幽门螺杆菌的危害 | 第11页 |
| 1.1.3 幽门螺杆菌现阶段的治疗方法与局限 | 第11-12页 |
| 1.2 转基因植物疫苗的应用与前景 | 第12-16页 |
| 1.2.1 转基因植物疫苗简介 | 第12-13页 |
| 1.2.2 转基因植物口服疫苗的优点 | 第13-14页 |
| 1.2.3 转基因植物口服疫苗潜在问题 | 第14-16页 |
| 1.3 幽门螺杆菌转基因番茄简介 | 第16-22页 |
| 1.3.1 转基因植物受体材料的选择 | 第16-17页 |
| 1.3.2 目标基因的选择 | 第17-19页 |
| 1.3.3 LTB 简介 | 第19-20页 |
| 1.3.4 FMDV-2A 的自剪切机制 | 第20-22页 |
| 1.3.5 幽门螺杆菌转基因植物的研究进展与未来发展 | 第22页 |
| 1.4 本研究的目的及内容 | 第22-24页 |
| 2. 材料与方法 | 第24-47页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-31页 |
| 2.1.1 实验番茄 | 第24页 |
| 2.1.2 表达载体 | 第24页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第24-25页 |
| 2.1.4 试剂材料 | 第25-27页 |
| 2.1.5 试剂配制 | 第27-30页 |
| 2.1.6 引物设计 | 第30-31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-47页 |
| 2.2.1 载体构建过程 | 第31-36页 |
| 2.2.2 载体鉴定过程 | 第36-38页 |
| 2.2.3 樱桃番茄组织培养过程 | 第38-39页 |
| 2.2.4 樱桃番茄遗传转化过程 | 第39-40页 |
| 2.2.5 转基因植株分子鉴定 | 第40-42页 |
| 2.2.6 外源基因整合拷贝数测定 | 第42-45页 |
| 2.2.7 植物表达蛋白测定 | 第45-46页 |
| 2.2.8 转基因樱桃番茄植株花粉活性研究 | 第46-47页 |
| 3. 实验结果 | 第47-74页 |
| 3.1 载体构建 | 第47-49页 |
| 3.2 载体检测结果 | 第49-50页 |
| 3.3 樱桃番茄再生体系的建立 | 第50-53页 |
| 3.4 樱桃番茄转化体系的建立 | 第53-59页 |
| 3.4.1 卡那霉素浓度对子叶愈伤组织诱导的影响 | 第53-54页 |
| 3.4.2 头孢霉素浓度对子叶愈伤组织诱导的影响 | 第54-55页 |
| 3.4.3 羧苄青霉素浓度对子叶愈伤组织诱导的影响 | 第55-56页 |
| 3.4.4 农杆菌侵染浓度对子叶愈伤组织诱导的影响 | 第56页 |
| 3.4.5 樱桃番茄遗传转化全过程 | 第56-59页 |
| 3.5 樱桃番茄转化植株分子鉴定结果 | 第59-64页 |
| 3.5.1 CHE8-2391Z 载体 | 第59-61页 |
| 3.5.2 CHE8-HpaA-eLTB 载体 | 第61-63页 |
| 3.5.3 CHE8-UreB-eLTB 载体 | 第63-64页 |
| 3.6 转基因植株外源基因拷贝数检测 | 第64-72页 |
| 3.6.1 内参基因标准曲线 | 第64-66页 |
| 3.6.2 目的基因标准曲线 | 第66-72页 |
| 3.7 转基因樱桃番茄可溶性蛋白检测 | 第72-73页 |
| 3.8 转基因樱桃番茄植株花粉活性研究结果 | 第73-74页 |
| 4. 讨论 | 第74-81页 |
| 4.1 载体构建 | 第74-75页 |
| 4.2 ‘黄樱桃-2 号’樱桃番茄的再生体系 | 第75-76页 |
| 4.3 ‘黄樱桃-2 号’樱桃番茄的遗传转化体系 | 第76-77页 |
| 4.4 外源基因整合拷贝数 | 第77-79页 |
| 4.5 外源蛋白表达 | 第79页 |
| 4.6 花粉活力比较 | 第79-80页 |
| 4.7 本研究创新性 | 第80-81页 |
| 5. 结论与展望 | 第81-83页 |
| 附录 | 第83-84页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-95页 |
| 致谢 | 第95页 |
