| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-10页 |
| 第一章 卵母细胞和胚胎玻璃化冷冻的研究进展 | 第13-19页 |
| 1.1 玻璃化冷冻的定义和发展历史 | 第13-14页 |
| 1.1.1 玻璃化冷冻的定义 | 第13页 |
| 1.1.2 玻璃化冷冻的发展历史 | 第13-14页 |
| 1.2 玻璃化冷冻方法及冷冻保护剂的类型 | 第14-16页 |
| 1.2.1 玻璃化冷冻方法 | 第14-15页 |
| 1.2.2 冷冻保护剂的类型 | 第15-16页 |
| 1.3 玻璃化冷冻对细胞超微结构的影响 | 第16-17页 |
| 1.3.1 冷冻对线粒体的影响 | 第16-17页 |
| 1.3.2 冷冻对透明带的影响 | 第17页 |
| 1.3.3 冷冻对细胞膜的影响 | 第17页 |
| 1.4 玻璃化冷冻对卵母细胞表观遗传修饰的影响 | 第17-19页 |
| 1.4.1 冷冻对卵母细胞DNA甲基化的影响 | 第17-18页 |
| 1.4.2 冷冻对卵母细胞组蛋白乙酰化的影响 | 第18-19页 |
| 第二章 白藜芦醇的研究进展 | 第19-23页 |
| 2.1 白藜芦醇的来源和理化性质 | 第19页 |
| 2.2 白藜芦醇的生物学功能 | 第19-20页 |
| 2.2.1 抗炎症作用 | 第19-20页 |
| 2.2.2 抗肿瘤活性 | 第20页 |
| 2.3 白藜芦醇对表观遗传调控的研究进展 | 第20-23页 |
| 2.3.1 表观遗传学的主要修饰机制 | 第20-21页 |
| 2.3.2 白藜芦醇对动物表观遗传学的影响 | 第21-23页 |
| 实验部分 | 第23-43页 |
| 第三章 白藜芦醇对冷冻卵母细胞早期胚胎发育的影响 | 第23-31页 |
| 3.1 实验材料 | 第23-25页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第23页 |
| 3.1.2 主要仪器设备和试剂 | 第23-25页 |
| 3.2 实验方法 | 第25-27页 |
| 3.2.1 卵母细胞的采集 | 第25页 |
| 3.2.2 MII期卵母细胞的冷冻及解冻 | 第25-26页 |
| 3.2.3 体外受精和胚胎培养 | 第26页 |
| 3.2.4 囊胚的凋亡染色 | 第26页 |
| 3.2.5 囊胚细胞计数 | 第26-27页 |
| 3.2.6 数据的统计分析 | 第27页 |
| 3.3 实验结果 | 第27-29页 |
| 3.3.1 白藜芦醇对卵母细胞生存率的影响 | 第27页 |
| 3.3.2 白藜芦醇对卵母细胞受精和胚胎发育的影响 | 第27-28页 |
| 3.3.3 白藜芦醇对囊胚质量的影响 | 第28-29页 |
| 3.4 讨论 | 第29-30页 |
| 3.5 小结 | 第30-31页 |
| 第四章 白藜芦醇对卵母细胞冷冻后表观遗传修饰的影响 | 第31-43页 |
| 4.1 实验材料 | 第31-32页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第31页 |
| 4.1.2 主要仪器设备和试剂 | 第31-32页 |
| 4.2 实验方法 | 第32-36页 |
| 4.2.1 MII期卵母细胞的采集 | 第32页 |
| 4.2.2 MII期卵母细胞的冷冻和解冻 | 第32页 |
| 4.2.3 卵母细胞和胚胎的免疫荧光染色 | 第32-33页 |
| 4.2.4 荧光密度分析 | 第33页 |
| 4.2.5 体外受精和胚胎培养 | 第33页 |
| 4.2.6 卵母细胞的qRT-PCR检测 | 第33-34页 |
| 4.2.7 亚硫酸氢盐测序 | 第34-36页 |
| 4.2.8 数据的统计分析 | 第36页 |
| 4.3 实验结果 | 第36-41页 |
| 4.3.1 白藜芦醇对MII期卵母细胞SIRT1基因表达的影响 | 第36-37页 |
| 4.3.2 白藜芦醇对MII期卵母细胞H3K9ac的影响 | 第37-38页 |
| 4.3.3 白藜芦醇对MII期卵母细胞5mC的影响 | 第38-39页 |
| 4.3.4 白藜芦醇对MII期卵母细胞印记基因的影响 | 第39-41页 |
| 4.5 讨论 | 第41-42页 |
| 4.6 小结 | 第42-43页 |
| 全文结论 | 第43-44页 |
| 创新点和后续研究工作 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-54页 |
| 缩略词表 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 作者简介 | 第56页 |
