| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-27页 |
| 1.1 钛基生物材料概述 | 第12-13页 |
| 1.2 钛基生物材料的表面改性 | 第13-16页 |
| 1.2.1 改性方法概述 | 第13-14页 |
| 1.2.2 钛基生物材料纳米结构化改性 | 第14-15页 |
| 1.2.3 TiO_2纳米管的优势 | 第15-16页 |
| 1.3 植入体与炎性细胞的相互作用 | 第16-20页 |
| 1.3.1 巨噬细胞 | 第17-19页 |
| 1.3.2 巨噬细胞表型转变的调控方法 | 第19-20页 |
| 1.4 医用水凝胶及其应用 | 第20-24页 |
| 1.4.1 概述 | 第20-22页 |
| 1.4.2 壳聚糖及其衍生物水凝胶 | 第22-24页 |
| 1.5 本论文的意义、主要内容及技术路线 | 第24-27页 |
| 1.5.1 本论文的研究目的和意义 | 第24-25页 |
| 1.5.2 本论文的主要内容 | 第25-27页 |
| 第二章 纳米结构钛表面凝胶层的制备及炎性因子的携载 | 第27-42页 |
| 2.1 引言 | 第27页 |
| 2.2 材料与方法 | 第27-31页 |
| 2.2.1 实验试剂和主要仪器 | 第27-28页 |
| 2.2.2 氧化钛纳米管的制备 | 第28-29页 |
| 2.2.3 凝胶层的制备和细胞因子的携载 | 第29-30页 |
| 2.2.4 凝胶层体外降解实验 | 第30-31页 |
| 2.2.5 因子体外释放实验 | 第31页 |
| 2.3 样品检测与表征 | 第31-33页 |
| 2.3.1 扫描电子显微镜 | 第31-32页 |
| 2.3.2 傅里叶变换红外光谱 | 第32页 |
| 2.3.3 X射线衍射 | 第32页 |
| 2.3.4 水接触角 | 第32-33页 |
| 2.3.5 酶联免疫吸附实验 | 第33页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第33-40页 |
| 2.4.1 样品表面形貌表征 | 第33-35页 |
| 2.4.2 XRD分析 | 第35页 |
| 2.4.3 水接触角表征 | 第35-36页 |
| 2.4.4 FTIR分析 | 第36-38页 |
| 2.4.5 凝胶层体外降解 | 第38-40页 |
| 2.4.6 炎性因子体外释放 | 第40页 |
| 2.5 本章小结 | 第40-42页 |
| 第三章 纳米结构钛表面凝胶层细胞相容性的评价 | 第42-51页 |
| 3.1 引言 | 第42页 |
| 3.2 材料与方法 | 第42-44页 |
| 3.2.1 实验试剂和主要仪器 | 第42-43页 |
| 3.2.2 细胞获取及培养 | 第43-44页 |
| 3.2.3 细胞接种及培养 | 第44页 |
| 3.3 细胞相容性表征 | 第44-47页 |
| 3.3.1 细胞增殖实验 | 第44-45页 |
| 3.3.2 活/死细胞染色 | 第45-46页 |
| 3.3.3 细胞形貌观察 | 第46-47页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第47-50页 |
| 3.4.1 alamarBlue实验 | 第47-48页 |
| 3.4.2 AO/PI染色 | 第48-49页 |
| 3.4.3 DAPI/phalloidin染色 | 第49-50页 |
| 3.5 本章小结 | 第50-51页 |
| 第四章 载有双重炎性因子的纳米管-凝胶层材料对巨噬细胞表型转变的调控 | 第51-60页 |
| 4.1 引言 | 第51页 |
| 4.2 材料与方法 | 第51-53页 |
| 4.2.1 实验试剂和主要仪器 | 第51-52页 |
| 4.2.2 细胞接种及培养 | 第52-53页 |
| 4.3 巨噬细胞表型检测 | 第53-56页 |
| 4.3.1 炎性相关细胞因子分泌测定 | 第53页 |
| 4.3.2 细胞表面标记物检测 | 第53-54页 |
| 4.3.3 炎性相关基因表达水平检测 | 第54-56页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第56-59页 |
| 4.5 本章小结 | 第59-60页 |
| 结论 | 第60-61页 |
| 本文研究展望 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-75页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文和参加的学术会议 | 第75页 |
| 发表的学术论文 | 第75页 |
| 参加的学术会议 | 第75页 |