摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-10页 |
第一篇 文献综述 | 第11-25页 |
第一章 干扰素的概述 | 第11-19页 |
1 干扰素分类 | 第11-12页 |
2 干扰素的特性 | 第12页 |
3 干扰素的生物学活性机制 | 第12-14页 |
3.1 干扰素的抗病毒功能 | 第12-13页 |
3.2 干扰素的免疫调节功能 | 第13-14页 |
4 干扰素基因工程研究 | 第14-17页 |
4.1 干扰素基因工程研究 | 第14-15页 |
4.2 猪β干扰素基因工程研究 | 第15-17页 |
参考文献 | 第17-19页 |
第二章 热休克蛋白70免疫学研究进展 | 第19-25页 |
1 HSPs在先天性免疫应答中的作用 | 第19-20页 |
1.1 HSPs激活树突状细胞及自然杀伤细胞 | 第19-20页 |
1.2 HSPs刺激产生细胞因子作用 | 第20页 |
2 HSP70在获得性免疫应答中的作用 | 第20-21页 |
3 HSPs在疾病疫苗及佐剂开发中的进展 | 第21-22页 |
4 小结 | 第22-23页 |
参考文献 | 第23-25页 |
第二篇 实验部分 | 第25-63页 |
第三章 三种生物活性蛋白重组真核表达载体的构建 | 第25-35页 |
摘要 | 第25-26页 |
1 材料与方法 | 第26-28页 |
1.1 实验用动物、表达载体、宿主菌 | 第26页 |
1.2 主要试剂及工具酶 | 第26页 |
1.3 培养基及有关溶液的配制 | 第26页 |
1.4 猪全基因的提取 | 第26页 |
1.5 引物设计及PCR扩增猪IFN-β、H.Ps-Hsp70及M.T-Hsp70基因 | 第26-27页 |
1.6 活性蛋白重组表达载体的构建 | 第27-28页 |
2 结果与分析 | 第28-31页 |
2.1 重组pPICZα-A-SwIFN-β的构建 | 第28-30页 |
2.2 基因工程重组pCDNA3.0-SwIFN-β,pCDNA3.0-H.Ps-Hsp70 | 第30-31页 |
3 讨论 | 第31-32页 |
参考文献 | 第32-33页 |
Abstract | 第33-35页 |
第四章 重组猪B干扰素对JEV生物学活性的研究 | 第35-53页 |
摘要 | 第35-36页 |
1 材料与方法 | 第36-41页 |
1.1 实验用动物、宿主菌、细胞和病毒 | 第36页 |
1.2 实验试剂 | 第36页 |
1.3 重组猪β-干扰素在酵母菌中的表达 | 第36-38页 |
1.4 JEV亚单位疫苗EDⅢ的表达与纯化 | 第38页 |
1.5 BHK-21细胞上抑制乙型脑炎病毒复制的研究 | 第38-39页 |
1.6 猪β干扰素作为流行性乙型脑炎亚单位疫苗免疫增强剂的研究 | 第39-41页 |
1.7 数据统计 | 第41页 |
2 结果与分析 | 第41-47页 |
2.1 SDS-PAGE结果 | 第41-42页 |
2.2 重组猪β-干扰素活性单位的测定 | 第42页 |
2.3 猪β干扰素在BHK-21细胞上抑制流行性乙型脑炎病毒复制 | 第42-44页 |
2.4 猪β干扰素作为流行性乙型脑炎亚单位疫苗EDⅢ免疫增强剂的结果 | 第44-47页 |
3 讨论 | 第47-49页 |
参考文献 | 第49-51页 |
Abstract | 第51-53页 |
第五章 三种免疫活性蛋白作为JEV亚单位疫苗EDⅢ免疫增强剂效果的比较研究 | 第53-63页 |
摘要 | 第53-54页 |
1 材料和方法 | 第54-57页 |
1.1 试剂和材料 | 第54页 |
1.2 试验猪分组、免疫程序及剂量 | 第54-55页 |
1.3 抗体ELISA检测试验 | 第55-56页 |
1.4 淋巴细胞增殖试验 | 第56页 |
1.5 细胞因子(IL-4、IFN-γ)检测试验 | 第56页 |
1.6 流行性乙型脑炎病毒中和试验 | 第56-57页 |
1.7 数据统计 | 第57页 |
2 结果与分析 | 第57-59页 |
2.1 ELISA检测血清抗体滴度 | 第57-58页 |
2.2 淋巴细胞增殖试验 | 第58页 |
2.3 细胞因子检测结果(IL-4和IFN-γ) | 第58-59页 |
2.4 流行性乙型脑炎病毒中和试验 | 第59页 |
3 讨论 | 第59-61页 |
参考文献 | 第61-62页 |
Abstract | 第62-63页 |
致谢 | 第63页 |