| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 文献回顾 | 第16-39页 |
| 一、人工关节置换术后无菌性松动的发病机制 | 第17-21页 |
| 二、磨损颗粒与假体周围骨溶解和无菌性松动发生的关系 | 第21-25页 |
| 三、破骨细胞的形成、分化、激活及其骨吸收原理 | 第25-29页 |
| 四、磨损颗粒诱导的生物学反应 | 第29-32页 |
| 五、磨损颗粒诱导的骨溶解发生过程中的分子生物学机制 | 第32-33页 |
| 六、药物治疗人工关节置换术后假体周围骨溶解和假体无菌性松动的研究现状 | 第33-35页 |
| 七、当归水溶性制备液的临床应用 | 第35-39页 |
| 第一部分 当归水溶性制备液抑制 UHMWPE 诱导的巨噬细胞促炎细胞因子的释放 | 第39-49页 |
| 1 材料 | 第39-40页 |
| 1.1 细胞系和主要试剂 | 第39页 |
| 1.2 UHMWPE 颗粒 | 第39-40页 |
| 1.3 当归水溶性制备液 | 第40页 |
| 2 方法 | 第40-42页 |
| 2.1 实验分组 | 第40页 |
| 2.2 细胞培养和当归水溶性制备液的细胞毒性检测 | 第40页 |
| 2.3 MTT 法检测细胞增值 | 第40-41页 |
| 2.4 细胞培养和细胞因子检测 | 第41-42页 |
| 2.5 统计学分析 | 第42页 |
| 3 结果 | 第42-45页 |
| 3.1 一般情况 | 第42页 |
| 3.2 细胞活力检测 | 第42-43页 |
| 3.3 细胞增殖情况检测 | 第43页 |
| 3.4 促炎细胞因子的检测 | 第43-45页 |
| 4 讨论 | 第45-49页 |
| 第二部分 当归水溶性制备液抑制 UHMWPE 颗粒诱导的小鼠颅骨骨溶解作用 | 第49-62页 |
| 1 材料 | 第49-50页 |
| 1.1 实验动物和主要试剂 | 第49页 |
| 1.2 UHMWPE 颗粒的准备 | 第49-50页 |
| 1.3 当归水溶性制备液 | 第50页 |
| 2 方法 | 第50-52页 |
| 2.1 小鼠颅骨骨溶解模型的建立 | 第50页 |
| 2.2 实验分组 | 第50-51页 |
| 2.3 标本收集、组织学培养和组织病理学染色 | 第51页 |
| 2.4 骨组织计量学指标计算分析 | 第51-52页 |
| 2.5 统计学分析 | 第52页 |
| 3 结果 | 第52-58页 |
| 3.1 实验动物 | 第52页 |
| 3.2 标本组织学及组织病理学分析 | 第52-56页 |
| 3.3 体内实验条件下促炎细胞因子的产生 | 第56-58页 |
| 4 讨论 | 第58-62页 |
| 第三部分 显微 CT 分析当归水溶性制备液抑制 UHMWPE 磨损颗粒诱导小鼠颅骨骨溶解效应 | 第62-68页 |
| 1 材料 | 第62-63页 |
| 1.1 实验动物和主要材料 | 第62页 |
| 1.2 显微 CT 仪器 | 第62-63页 |
| 2 方法 | 第63-65页 |
| 2.1 UHMWPE 磨损颗粒的处理 | 第63页 |
| 2.2 当归水溶性制备液的制备 | 第63页 |
| 2.3 实验动物分组、动物手术步骤和标本收集及处理 | 第63-64页 |
| 2.4 显微 CT 各项参数的意义 | 第64页 |
| 2.5 统计学分析 | 第64-65页 |
| 3 结果 | 第65-66页 |
| 4 讨论 | 第66-68页 |
| 小结 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-91页 |
| 附录 | 第91-94页 |
| 个人简历和研究成果 | 第94-95页 |
| 致谢 | 第95页 |
