中文摘要 | 第4-8页 |
英文摘要 | 第8-11页 |
目录 | 第12-14页 |
中英文对照表 | 第14-16页 |
引言 | 第16-19页 |
第一章 急性髓细胞性白血病血管新生研究 | 第19-34页 |
1.1 前言 | 第19页 |
1.2 材料与方法 | 第19-23页 |
1.2.1 研究对象 | 第19-20页 |
1.2.2 主要仪器及试剂 | 第20页 |
1.2.3. 试剂配制 | 第20页 |
1.2.4 标本制备及处理 | 第20-22页 |
1.2.5 骨髓切片免疫组化染色 | 第22-23页 |
1.2.6 计数骨髓病理切片微血管 | 第23页 |
1.2.7 免疫组化检测急性白血病患者骨髓单个核细胞内VEGF蛋白的表达 | 第23页 |
1.2.8 统计学分析 | 第23页 |
1.3 结果 | 第23-31页 |
1.3.1 急性髓细胞白血病患者骨髓组织微血管密度 | 第23-25页 |
1.3.2 MVD与疾病的分型、浸润的关系 | 第25-27页 |
1.3.3 急性髓细胞性白血病患者骨髓VEGF蛋白的表达 | 第27-29页 |
1.3.4 MVD与VEGF蛋白的相关性 | 第29-31页 |
1.4 讨论 | 第31-33页 |
1.5 结论 | 第33-34页 |
第二章 α-乳香酸对HL-60细胞株VEGF分泌及其受体表达的影响 | 第34-63页 |
2.1 前言 | 第34页 |
2.2 材料与方法 | 第34-44页 |
2.2.1 主要试剂与材料 | 第34-35页 |
2.2.2 主要实验仪器 | 第35-36页 |
2.2.3 主要实验方法 | 第36-44页 |
2.2.4 统计学分析 | 第44页 |
2.3 结果 | 第44-59页 |
2.3.1 MTT检测α-乳香酸(a BA)对急性髓细胞白血病HL-60细胞增殖的影响 | 第44-46页 |
2.3.2 ELISA检测培养上清液VEGF浓度变化结果 | 第46-48页 |
2.3.3 α-乳香酸处理HL-60细胞前后VEGF及其受体mRNA表达的定量检测 | 第48-53页 |
2.3.4 Western Blot检测α-乳香酸对HL-60细胞VEGF及其受体蛋白表达的影响 | 第53-59页 |
2.4 讨论 | 第59-62页 |
2.5 结论 | 第62-63页 |
第三章 α-乳香酸抗急性白血病裸鼠血管新生的实验研究 | 第63-75页 |
3.1 前言 | 第63页 |
3.2. 材料与方法 | 第63-66页 |
3.2.1 实验动物 | 第63页 |
3.2.2 实验用白血病细胞株及培养 | 第63-64页 |
3.2.3 主要试剂 | 第64页 |
3.2.4 主要仪器设备 | 第64页 |
3.2.5 动物模型构建 | 第64-65页 |
3.2.6 实验分组及处理方案 | 第65-66页 |
3.2.7 组织病理学检查 | 第66页 |
3.2.8 石蜡包埋骨髓病理切片免疫组化法观察裸鼠骨髓微血管密度(MVD)及微血管定量 | 第66页 |
3.2.9 裸鼠血清血管内皮生长因子(VEGF)浓度检测 | 第66页 |
3.2.10 统计学分析 | 第66页 |
3.3 结果 | 第66-72页 |
3.3.1 小鼠白血病模型鉴定 | 第66-69页 |
3.3.2 病理学检查 | 第69-70页 |
3.3.3 不同剂量α-乳香酸处理各组裸鼠体内血管增生的比较 | 第70-71页 |
3.3.4 不同剂量α-乳香酸治疗组裸鼠血浆中VEGF的表达 | 第71-72页 |
3.3.5 VEGF与MVD的相关性分析 | 第72页 |
3.4 讨论 | 第72-74页 |
3.5. 结论 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-82页 |
综述一 | 第82-98页 |
参考文献 | 第92-98页 |
综述二 | 第98-121页 |
参考文献 | 第112-121页 |
致谢 | 第121-122页 |
攻读博士期间的学术成果 | 第122-123页 |
论文 | 第122-123页 |
著作 | 第123页 |
获奖 | 第123页 |
课题 | 第123页 |