| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 引言 | 第9-19页 |
| 1.1 家禽对碳水化合物消化吸收特点 | 第9-10页 |
| 1.1.1 淀粉和非淀粉多糖的消化 | 第9-10页 |
| 1.1.2 单糖的吸收 | 第10页 |
| 1.2 肠道葡萄糖吸收转运载体的研究进展 | 第10-16页 |
| 1.2.1 葡萄糖转运载体的分类 | 第11-12页 |
| 1.2.2 肠道葡萄糖的吸收机制 | 第12-13页 |
| 1.2.3 葡萄糖转运载体在肠道的表达分布 | 第13页 |
| 1.2.4 影响转运葡萄糖载体表达的因素 | 第13-16页 |
| 1.3 实时荧光定量 PCR 技术简介 | 第16-18页 |
| 1.3.1 实时荧光定量 PCR 原理 | 第16页 |
| 1.3.2 实时荧光定量 PCR 技术检测方法 | 第16-17页 |
| 1.3.3 实时荧光定量 PCR 的重要参数 | 第17-18页 |
| 1.3.4 实时荧光定量 PCR 的定量方法 | 第18页 |
| 1.4 研究目的及意义 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-29页 |
| 2.1 试验材料 | 第19-22页 |
| 2.1.1 试验时间与试验地点 | 第19页 |
| 2.1.2 试验动物 | 第19页 |
| 2.1.3 试验设计与日粮组成 | 第19-20页 |
| 2.1.4 试验动物的饲养与管理 | 第20页 |
| 2.1.5 样品的采集与制备 | 第20页 |
| 2.1.6 主要试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.7 主要仪器 | 第21页 |
| 2.1.8 溶液的配制 | 第21-22页 |
| 2.2 试验指标及测定方法 | 第22-28页 |
| 2.2.1 小肠 SGLT1、GLUT2 mRNA 表达量的测定 | 第22-28页 |
| 2.2.2 生产性能指标的测定 | 第28页 |
| 2.3 计算及统计方法 | 第28-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-37页 |
| 3.1 海兰灰蛋鸡小肠 SGLT1、GLUT2 基因实时荧光定量 PCR 条件的建立 | 第29-32页 |
| 3.1.1 小肠粘膜组织总 RNA 的提取效果 | 第29页 |
| 3.1.2 SGLT1、GLUT2 及β-actin 基因 RT-PCR 的扩增结果 | 第29-30页 |
| 3.1.3 SGLT1、GLUT2 及β-actin 基因克隆质粒测序结果 | 第30-31页 |
| 3.1.4 SGLT1、GLUT2 及β-actin 基因的实时荧光定量曲线图 | 第31-32页 |
| 3.2 海兰灰蛋鸡育成期小肠 SGLT1 、GLUT2 MRNA 相对表达量的变化 | 第32-34页 |
| 3.2.1 海兰灰蛋鸡育成期小肠 SGLT1mRNA 不同日龄相对表达量 | 第32-33页 |
| 3.2.2 海兰灰蛋鸡育成期小肠 GLUT2 mRNA 不同日龄相对表达量 | 第33页 |
| 3.2.3 海兰灰蛋鸡育成期小肠 SGLT1 、GLUT2 mRNA 相对表达量的变化 | 第33-34页 |
| 3.3 海兰灰蛋鸡育成期生产性能测定结果 | 第34-36页 |
| 3.4 海兰灰蛋鸡育成期小肠 SGLT1、GLUT2 MRNA 的表达量与生产性能各指标的动态变化 | 第36-37页 |
| 4 讨论 | 第37-41页 |
| 4.1 实时荧光定量 PCR 技术检测 SGLT1、GLUT2MRNA 试验成功的条件 | 第37-38页 |
| 4.1.1 总 RNA 的提取质量 | 第37页 |
| 4.1.2 引物的设计 | 第37页 |
| 4.1.3 标准曲线的建立 | 第37-38页 |
| 4.2 海兰灰蛋鸡育成期 SGLT1 、GLUT2 MRNA 的表达发育变化 | 第38-41页 |
| 4.2.1 海兰灰蛋鸡育成期 SGLT1 mRNA 表达发育变化 | 第38-39页 |
| 4.2.2 海兰灰蛋鸡育成期 GLUT2 mRNA 表达发育变化 | 第39页 |
| 4.2.3 海兰灰蛋鸡育成期 SGLT1、GLUT2 mRNA 表达发育变化与生产性能的关系 | 第39-41页 |
| 5 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-49页 |
| 在读期间发表的论文 | 第49-50页 |
| 作者简介 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
