| 中文摘要 | 第7-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 第一章 ：乌司他丁抑制 LPS 介导小鼠肾脏固有 DC 成熟 | 第17-25页 |
| 1. 实验动物、试剂和仪器 | 第17-18页 |
| 1.1 动物 | 第17页 |
| 1.2 主要试剂及仪器 | 第17-18页 |
| 2. 方法 | 第18-19页 |
| 2.1 小鼠 rDC 的分选及纯度鉴定制备肾脏单细胞悬液 | 第18页 |
| 2.2 LPS 刺激及 UTI 处理 | 第18页 |
| 2.3 ELISA 测定 | 第18-19页 |
| 2.4 迁移能力检测 | 第19页 |
| 3. 统计学分析 | 第19页 |
| 4. 结果 | 第19-24页 |
| 4.1 分选出 rDC 的纯度鉴定结果 | 第19-20页 |
| 4.2 乌司他丁抑制 LPS 刺激后 rDC 的促炎细胞因子释放 | 第20-21页 |
| 4.3 乌司他丁抑制 LPS 刺激后 rDC 表型成熟 | 第21-22页 |
| 4.4 乌司他丁抑制 LPS 刺激后 rDC 表面趋化因子受体表达 | 第22-23页 |
| 4.5 乌司他丁抑制 LPS 刺激后 rDC 的趋化能力 | 第23-24页 |
| 5. 讨论 | 第24-25页 |
| 第二章 ：小鼠肾移植模型的建立 | 第25-32页 |
| 1. 实验动物、主要试剂及仪器 | 第25-26页 |
| 1.1 动物 | 第25页 |
| 1.2 主要试剂及仪器 | 第25-26页 |
| 2. 实验方法 | 第26-29页 |
| 2.1 供肾切取及保存 | 第26-27页 |
| 2.2 受体手术 | 第27-29页 |
| 2.3 术后处理 | 第29页 |
| 3. 统计学分析 | 第29页 |
| 4. 结果 | 第29-30页 |
| 5. 讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 ：乌司他丁抑制移植肾树突状细胞成熟减轻移植肾排斥反应 | 第32-49页 |
| 1. 实验动物、主要试剂及仪器 | 第32-34页 |
| 1.1 动物 | 第32页 |
| 1.2 主要试剂及仪器 | 第32-34页 |
| 2. 方法 | 第34-39页 |
| 2.1 小鼠肾移植模型的建立 | 第34-35页 |
| 2.2 肾功能检测 | 第35页 |
| 2.3 HE 染色 | 第35-36页 |
| 2.4 RT-PCR 测定炎症因子 | 第36-38页 |
| 2.5 小鼠肾脏单细胞悬液的制备及流式细胞仪分析 | 第38-39页 |
| 3. 统计学分析 | 第39页 |
| 4. 结果 | 第39-47页 |
| 4.1 乌司他丁改善移植后受鼠肾功能 | 第39页 |
| 4.2 乌司他丁减轻急性排斥反应 | 第39-42页 |
| 4.3 乌司他丁抑制移植后炎症因子 mRNA 合成 | 第42-43页 |
| 4.4 乌司他丁抑制移植后 DC 表型成熟 | 第43-47页 |
| 5. 讨论 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 文献综述 | 第52-58页 |
| 参考文献 | 第56-58页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-61页 |
