| 第一部分 曲古抑菌素A对淋巴瘤细胞株FL5.12增殖和凋亡的作用及其机制研究 | 第5-38页 |
| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 前言 | 第9-13页 |
| 1 材料与方法 | 第13-25页 |
| 1.1 材料及分组 | 第13-17页 |
| 1.1.1 细胞株 | 第13页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第13-14页 |
| 1.1.3 主要试剂及试剂盒 | 第14-16页 |
| 1.1.4 抗体 | 第16页 |
| 1.1.5 引物 | 第16-17页 |
| 1.1.6 实验分组 | 第17页 |
| 1.2 实验方法 | 第17-25页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第17-18页 |
| 1.2.2 MTT方法检测细胞增殖效率 | 第18页 |
| 1.2.3 DNA ladder分析检测细胞凋亡 | 第18-19页 |
| 1.2.4 细胞形态学观察 | 第19-20页 |
| 1.2.5 PI染色检测细胞存活率 | 第20页 |
| 1.2.6 Western blot检测相关蛋白表达 | 第20-22页 |
| 1.2.7 半定量RT-PCR检测细胞凋亡相关基因的变化 | 第22-25页 |
| 1.2.8 统计学分析 | 第25页 |
| 2 结果 | 第25-34页 |
| 2.1 TSA以时间和剂量依赖性方式抑制FL5.12的增殖 | 第25-27页 |
| 2.2 TSA促进FL5.12凋亡 | 第27-30页 |
| 2.2.1 FL5.12细胞凋亡形态发生改变 | 第27页 |
| 2.2.2 TSA能改变凋亡效应蛋白的表达水平 | 第27-28页 |
| 2.2.3 TSA增加染色体固缩 | 第28-30页 |
| 2.3 TSA通过PU.1-Bim通路诱导FL5.12细胞凋亡 | 第30-32页 |
| 2.4 TSA不通过mTOR信号通路诱导FL5.12凋亡 | 第32-34页 |
| 2.4.1 TSA抑制FL5.12的S6磷酸化 | 第32-33页 |
| 2.4.2 TSA不依赖mTOR通路诱导凋亡 | 第33-34页 |
| 3 讨论 | 第34-36页 |
| 参考文献 | 第36-38页 |
| 第二部分 阿司匹林对淋巴瘤细胞株FL5.12增殖和凋亡的作用及其机制研究 | 第38-66页 |
| 摘要 | 第38-40页 |
| Abstract | 第40-42页 |
| 前言 | 第42-45页 |
| 1 材料与方法 | 第45-52页 |
| 1.1 材料及分组 | 第45-49页 |
| 1.1.1 细胞株 | 第45页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第45-46页 |
| 1.1.3 主要试剂及试剂盒 | 第46-48页 |
| 1.1.4 抗体 | 第48页 |
| 1.1.5 引物 | 第48页 |
| 1.1.6 实验分组 | 第48-49页 |
| 1.2 实验方法 | 第49-52页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第49页 |
| 1.2.2 MTT方法检测细胞增殖效率 | 第49页 |
| 1.2.3 DNA ladder分析检测细胞凋亡 | 第49页 |
| 1.2.4 PI染色检测细胞存活率 | 第49-50页 |
| 1.2.5 Western blot检测相关蛋白表达 | 第50页 |
| 1.2.6 半定量RT-PCR检测细胞凋亡相关基因的变化 | 第50-52页 |
| 2 结果 | 第52-60页 |
| 2.1 阿司匹林对FL5.12相关细胞增殖的影响 | 第52-53页 |
| 2.2 无水乙醇细胞毒性试验 | 第53-54页 |
| 2.3 阿司匹林处理抑制FL5.12相关细胞增殖的动态分析 | 第54-55页 |
| 2.4 阿司匹林促进FI5.12相关细胞系的凋亡 | 第55-57页 |
| 2.5 阿司匹林处理诱导FL5.12相关细胞系凋亡机制的初步探讨 | 第57-58页 |
| 2.5.1 Caspase 3抑制剂对阿司匹林诱导细胞凋亡的作用 | 第57页 |
| 2.5.2 阿司匹林处理对细胞Bcl-2家族基因的影响 | 第57-58页 |
| 2.6 阿司匹林处理对FL5.12相关细胞系mTOR通路的影响 | 第58-60页 |
| 3 讨论 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-66页 |
| 附录一 英汉缩略对照表 | 第66-68页 |
| 附录二 溶液配方 | 第68-71页 |
| 研究生简历 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-74页 |
