缺血缺氧致小鼠海马炎症损伤与DNA甲基化改变的研究
| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 引言 | 第10-12页 |
| 2 仪器、试剂、材料和方法 | 第12-20页 |
| 2.1 主要仪器 | 第12页 |
| 2.2 主要试剂 | 第12-14页 |
| 2.3 主要试剂的配制 | 第14-16页 |
| 2.4 实验方法 | 第16-20页 |
| 2.4.1 实验动物和分组 | 第16页 |
| 2.4.2 海马脑片的制备 | 第16-17页 |
| 2.4.3 缺血缺氧性脑损伤模型的建立 | 第17页 |
| 2.4.4 TTC染色检测HIBD模型 | 第17-18页 |
| 2.4.5 冰冻切片行海马脑片再切技术 | 第18页 |
| 2.4.6 免疫组织化学染色 | 第18页 |
| 2.4.7 Western Blotting检测 | 第18-19页 |
| 2.4.8 统计学分析 | 第19-20页 |
| 3 结果 | 第20-30页 |
| 3.1 缺血缺氧海马脑片模型的建立 | 第20-21页 |
| 3.2 缺血缺氧与小鼠海马CA1区炎症损伤 | 第21-25页 |
| 3.3 缺血缺氧与小鼠海马DNA甲基化水平改变 | 第25-30页 |
| 4 讨论 | 第30-36页 |
| 4.1 缺血缺氧海马脑片模型的建立 | 第30-31页 |
| 4.2 缺血缺氧与小鼠海马CA1区炎症损伤 | 第31-33页 |
| 4.3 缺血缺氧与小鼠海马DNA甲基化水平改变 | 第33-36页 |
| 5 结论 | 第36-38页 |
| 参考文献 | 第38-42页 |
| 文献综述 DNA甲基化的研究进展 | 第42-57页 |
| 1 DNA甲基化 | 第42-43页 |
| 1.1 DNA甲基化的概念 | 第42-43页 |
| 1.2 DNA甲基化相关酶 | 第43页 |
| 2 DNA甲基化的生理学功能 | 第43-44页 |
| 3 DNA甲基化的病理学功能 | 第44-50页 |
| 3.1 DNA甲基化与肿瘤 | 第44-45页 |
| 3.2 DNA甲基化与2型糖尿病 | 第45-46页 |
| 3.3 DNA甲基化与神经退行性疾病 | 第46-48页 |
| 3.3.1 DNA甲基化与阿尔兹海默症 | 第46-47页 |
| 3.3.2 DNA甲基化与帕金森病 | 第47-48页 |
| 3.4 DNA甲基化与缺血性脑卒中 | 第48-50页 |
| 4 展望 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-57页 |
| 主要英汉缩略语对照表 | 第57-59页 |
| 攻读学位期间发表学术论文及科研情况 | 第59-60页 |
| 参加河南大学科研创新项目 | 第59页 |
| 论文发表情况 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
