| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 中英文缩略词表 | 第10-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-15页 |
| 第2章 材料和方法 | 第15-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第15-18页 |
| 2.1.1 实验动物来源 | 第15页 |
| 2.1.2 主要试剂及耗材 | 第15-16页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第16页 |
| 2.1.4 主要试剂配方 | 第16-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-24页 |
| 2.2.1 器材的准备 | 第18页 |
| 2.2.2 SD大鼠BMSCs原代分离培养、纯化、鉴定 | 第18-19页 |
| 2.2.3 CCK-8 法测定BMSCs生长曲线 | 第19页 |
| 2.2.4 诱导分化分组 | 第19页 |
| 2.2.5 蛋白聚糖的Alcian Blue染色及细胞形态学观察 | 第19页 |
| 2.2.6 RT-PCR检测相关m RNA表达水平 | 第19-22页 |
| 2.2.7 Western blot检测相关蛋白表达水平 | 第22-24页 |
| 2.3 统计学处理 | 第24-25页 |
| 第3章 结果 | 第25-30页 |
| 3.1 大鼠BMSCs形态学观察 | 第25页 |
| 3.2 BMSCs生长曲线测定 | 第25-26页 |
| 3.3 BMSCs诱导后形态改变及Alcian Blue染色结果观察 | 第26-27页 |
| 3.4 成软骨分化标志及Wnt/β-catenin信号通路关键组件m RNA水平检测结果 | 第27-28页 |
| 3.5 成软骨分化标志及Wnt/β-catenin信号通路关键组件蛋白表达水平检测结果 | 第28-30页 |
| 第4章 讨论 | 第30-32页 |
| 4.1 BMSCs概述 | 第30页 |
| 4.2 GDF-5 及淫羊藿素诱导BMSCs成软骨分化 | 第30-31页 |
| 4.3 Wnt/β-catenin信号通路对BMSCs成软骨分化的影响 | 第31-32页 |
| 第5章 结论 | 第32-33页 |
| 致谢 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-37页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第37-38页 |
| 综述 Wnt信号通路调控干细胞成软骨分化 | 第38-47页 |
| 参考文献 | 第45-47页 |
