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脱落酸在水稻条纹病毒与寄主水稻互作中的作用

摘要第8-11页
Abstract第11-13页
1 引言第14-32页
    1.1 水稻条纹叶枯病的研究现状第14-21页
        1.1.1 水稻条纹病毒(RSV)基因组的结构与功能第14-16页
        1.1.2 症状第16页
        1.1.3 RSV的致病机理第16-17页
        1.1.4 水稻抗条纹叶枯病的抗性遗传和育种研究第17-19页
        1.1.5 水稻条纹叶枯病控制的分子生物学策略第19-21页
    1.2 脱落酸(ABA)在植物与病原物互作中的作用第21-30页
        1.2.1 ABA概述第21页
        1.2.2 ABA的生物合成第21-22页
        1.2.3 ABA的生理功能第22页
        1.2.4 ABA的信号传导第22-24页
        1.2.5 ABA在病原物与植物互作中的作用第24-29页
        1.2.6 ABA介导的生物胁迫和非生物胁迫的互作第29-30页
    1.3 本研究的目的和意义第30-32页
2 外源ABA处理对水稻条纹叶枯病发生的影响第32-44页
    2.1 材料与方法第33-37页
        2.1.1 RSV毒源第33页
        2.1.2 介体昆虫及获毒第33页
        2.1.3 水稻品种及人工接虫鉴定第33-34页
        2.1.4 水稻条纹叶枯病抗性评价标准第34页
        2.1.5 稻苗外施ABA和接毒处理第34-35页
        2.1.6 外源ABA处理对RSV复制的影响第35-37页
        2.1.7 ABA合成抑制剂norflurazon对水稻RSV复制的影响第37页
    2.2 结果与分析第37-41页
        2.2.1 水稻种子发芽试验第37页
        2.2.2 RSV致病的生物学特征第37-40页
        2.2.3 武育粳3号稻苗外施ABA和接毒处理第40-41页
        2.2.4 外施ABA处理对水稻RSV含量的影响第41页
        2.2.5 ABA合成抑制剂norflurazon对水稻RSV复制的影响第41页
    2.3 讨论第41-44页
3 RSV胁迫下不同抗性水稻中内源ABA含量的动态变化第44-50页
    3.1 材料与方法第44-45页
        3.1.1 RSV毒源和昆虫介体第44页
        3.1.2 水稻品种及其种植条件第44页
        3.1.3 RSV胁迫处理和取样第44-45页
        3.1.4 内源ABA含量的测定第45页
    3.2 结果与分析第45-48页
        3.2.1 HPLC可行性检测第45-46页
        3.2.2 RSV胁迫下武育粳3号中ABA含量的动态变化第46-47页
        3.2.3 RSV胁迫下KT95-418中ABA含量的变化第47-48页
    3.3 讨论第48-50页
4 RSV胁迫下抗、感水稻中与ABA相关基因的表达特征第50-62页
    4.1 材料与方法第51-54页
        4.1.1 RSV毒源和昆虫介体第51页
        4.1.2 水稻品种及其种植条件第51页
        4.1.3 RSV胁迫处理和取样第51页
        4.1.4 外源ABA处理第51页
        4.1.5 稻苗中总RNA的提取第51-52页
        4.1.6 ABA相关基因表达量变化的测定第52-54页
    4.2 结果与分析第54-59页
        4.2.1 稻苗总RNA的质量检测第54页
        4.2.2 引物反应性确认和2~(-△△Ct)方法确认第54-55页
        4.2.3 RSV胁迫下武育粳3号中ABA相关基因的表达特征第55-57页
        4.2.4 RSV胁迫下KT95-418中ABA相关基因的表达特征第57-59页
        4.2.5 外源ABA处理对水稻和RSV互作中ABA相关基因的影响第59页
    4.3 讨论第59-62页
5 RSV胁迫下不同抗性水稻品种ABA受体基因表达特征第62-68页
    5.1 材料与方法第62-64页
        5.1.1 RSV毒源和昆虫介体第62页
        5.1.2 水稻品种及其种植条件第62页
        5.1.3 RSV胁迫处理和取样第62-63页
        5.1.4 水稻叶片总RNA的提取第63页
        5.1.5 ABA受体基因GCR2,FCA和ABAR表达量变化的测定第63-64页
    5.2 结果与分析第64-66页
        5.2.1 总RNA的质量检测第64页
        5.2.2 引物反应性确认和2~(-△△Ct)方法确认第64-65页
        5.2.3 在RSV胁迫下武育粳3号中ABA受体基因的表达特征第65页
        5.2.4 在RSV胁迫下KT95-418中ABA受体基因的表达特征第65-66页
        5.2.5 在RSV胁迫下抗、感病品种中ABA受体基因表达特征比较第66页
    5.3 讨论第66-68页
6 水稻条纹病毒胁迫下抗、感病水稻品种胼胝质的沉积第68-73页
    6.1 材料与方法第68-69页
        6.1.1 RSV毒源和昆虫介体第68页
        6.1.2 水稻品种及种植条件第68-69页
        6.1.3 RSV胁迫处理和取样第69页
        6.1.4 胼胝质的观察第69页
    6.2 结果与分析第69-71页
        6.2.1 RSV胁迫下感病水稻叶片中胼胝质沉积的变化第69-70页
        6.2.2 RSV胁迫下抗病水稻叶片中胼胝质沉积的变化第70-71页
    6.3 讨论第71-73页
7 RSV胁迫下水稻中与ABA相关基因编码区的克隆第73-79页
    7.1 材料与方法第73-76页
        7.1.1 RSV毒源和昆虫介体第73页
        7.1.2 水稻样品的获得第73页
        7.1.3 水稻叶片总RNA的提取第73页
        7.1.4 RToPCR扩增第73-74页
        7.1.5 TA克隆第74-75页
        7.1.6 重组克隆子的鉴定第75-76页
    7.2 结果与分析第76-77页
        7.2.1 丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶类蛋白基因编码区的克隆第76-77页
        7.2.2 33 kDa分泌蛋白基因编码区的克隆第77页
    7.3 讨论第77-79页
结语第79-80页
参考文献第80-94页
附录1 攻博期间发表(投稿)的论文第94-95页
致谢第95页

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