| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 缩略词 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 实验一 SD大鼠神经干细胞的培养与鉴定 | 第14-24页 |
| 材料与方法 | 第14-20页 |
| 1 实验材料 | 第14-15页 |
| 1.1 实验动物 | 第14页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第14-15页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第15页 |
| 1.4 主要试剂配置 | 第15页 |
| 2 实验方法 | 第15-20页 |
| 2.1 Ed16孕鼠制备 | 第15-16页 |
| 2.2 神经干细胞分离与培养 | 第16-17页 |
| 2.3 神经干细胞Nestin鉴定 | 第17-18页 |
| 2.4 神经干细胞分化的细胞形态学观察 | 第18页 |
| 2.5 神经干细胞Brdu标记与检测 | 第18-20页 |
| 结果 | 第20-22页 |
| 1 原代细胞培养观察 | 第20页 |
| 2 传代细胞培养观察 | 第20页 |
| 3 神经干细胞Nestin鉴定 | 第20页 |
| 4 神经干细胞分化的细胞形态学观察 | 第20-21页 |
| 5 神经干细胞的BrdU标记与检测 | 第21-22页 |
| 讨论 | 第22-24页 |
| 1 神经干细胞分离与培养 | 第22-23页 |
| 2 神经干细胞Nestin鉴定 | 第23-24页 |
| 实验二 龟羚帕安丸对PD大鼠NSCs移植后中脑黑质TH、GDNF及Ptx3表达的影响 | 第24-40页 |
| 材料与方法 | 第24-32页 |
| 1 实验材料 | 第24-26页 |
| 1.1 实验动物 | 第24页 |
| 1.2 主要实验药品与试剂 | 第24-25页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第25页 |
| 1.4 主要试剂配置 | 第25-26页 |
| 2 实验方法 | 第26-32页 |
| 2.1 技术路线图 | 第26页 |
| 2.2 PD大鼠模型建立 | 第26-27页 |
| 2.3 帕金森病大鼠模型判定标准 | 第27页 |
| 2.4 神经干细胞移植 | 第27页 |
| 2.5 实验分组与处理 | 第27-28页 |
| 2.6 指标检测 | 第28-30页 |
| 2.7 统计分析 | 第30-32页 |
| 结果 | 第32-36页 |
| 1 帕金森病大鼠模型建立 | 第32页 |
| 2 对各组大鼠行为学影响 | 第32-33页 |
| 3 对各组大鼠纹状体BrdU标记的NSCs影响 | 第33页 |
| 4 对各组大鼠中脑黑质TH蛋白及mRNA表达影响 | 第33-34页 |
| 5 对各组大鼠中脑黑质GDNF及Ptx3蛋白表达影响 | 第34页 |
| 6 TH与GDNF、Ptx3相关性分析 | 第34-35页 |
| 7 中脑黑质致密部HE染色观察 | 第35-36页 |
| 讨论 | 第36-40页 |
| 1 帕金森病大鼠模型建立 | 第36页 |
| 2 中医对帕金森病认识 | 第36-37页 |
| 3 龟羚帕安丸诱导移植NSCs分化为多DA能神经元机制分析 | 第37-39页 |
| 4 龟羚帕安丸对PD模型神经干细胞诱导分化作用机制 | 第39-40页 |
| 结论 | 第40-42页 |
| 参考文献 | 第42-46页 |
| 致谢 | 第46-48页 |
| 附录1 图片 | 第48-60页 |
| 附录2 综述 | 第60-68页 |
| 参考文献 | 第65-68页 |
| 附录3 研究生期间发表论文及参与科研情况 | 第68页 |
