| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文缩写词索引 | 第15-16页 |
| 第1章 绪论 | 第16-20页 |
| 第2章 果胶-阿霉素大分子前药纳米胶束的制备与理化特性表征 | 第20-30页 |
| 2.1 主要材料与试剂 | 第20页 |
| 2.2 主要仪器 | 第20-21页 |
| 2.3 实验方法 | 第21-24页 |
| 2.3.1 果胶-阿霉素大分子前药（PDC）的合成 | 第21页 |
| 2.3.2 果胶-阿霉素大分子前药纳米胶束的制备（PDC-M） | 第21-22页 |
| 2.3.3 PDC的结构表征 | 第22页 |
| 2.3.4 PDC-M纳米胶束体系的制备条件优化 | 第22页 |
| 2.3.5 PDC-M纳米胶束体系的形貌表征 | 第22页 |
| 2.3.6 PDC-M纳米胶束体系的粒径及Zeta电位测量 | 第22-23页 |
| 2.3.7 PDC-M的载药量和包封率的测定 | 第23-24页 |
| 2.3.7.1 检测波长的确定 | 第23页 |
| 2.3.7.2 DOX溶液标准曲线的绘制 | 第23页 |
| 2.3.7.3 载药量和包封率的测定 | 第23-24页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第24-30页 |
| 2.4.1 PDC的红外图谱(FTIR)分析 | 第24-25页 |
| 2.4.2 PDC的核磁共振谱(H1NMR)分析 | 第25-26页 |
| 2.4.3 PDC-M的优化条件 | 第26页 |
| 2.4.4 PDC-M的粒径及zeta电位表征 | 第26页 |
| 2.4.5 PDC-M的形貌表征 | 第26-27页 |
| 2.4.6 PDC-M的载药量和包封率 | 第27-29页 |
| 2.4.6.1 检测波长的确定 | 第27-28页 |
| 2.4.6.2 DOX溶液的标准曲线 | 第28页 |
| 2.4.6.3 载药量和包封率 | 第28-29页 |
| 2.4.7 讨论 | 第29-30页 |
| 第3章 果胶-阿霉素大分子前药纳米胶束体系的抗肿瘤和缓控释效果研究 | 第30-44页 |
| 3.1 主要材料试剂 | 第30-31页 |
| 3.2 主要实验仪器 | 第31页 |
| 3.3 实验方法 | 第31-35页 |
| 3.3.1 PDC-M的体外释放实验 | 第31-32页 |
| 3.3.1.1 不同p H条件下的波长检测 | 第31页 |
| 3.3.1.2 标准曲线的绘制 | 第31-32页 |
| 3.3.1.3 体外释放实验 | 第32页 |
| 3.3.2 CCK8法检测DOX以及PDC-M纳米胶束体系对肿瘤细胞的增殖抑制作用 | 第32-35页 |
| 3.3.2.1 主要溶液的配置 | 第32-33页 |
| 3.3.2.2 细胞培养 | 第33-34页 |
| 3.3.2.3 DOX以及PDC-M纳米胶束体系对肿瘤细胞的增殖抑制作用 | 第34-35页 |
| 3.3.3 流式细胞仪测定DOX和PDC-M的细胞摄取情况 | 第35页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第35-44页 |
| 3.4.1 PDC-M的体外释放实验 | 第35-39页 |
| 3.4.1.1 检测波长的确定 | 第35页 |
| 3.4.1.2 标准曲线的绘制 | 第35-37页 |
| 3.4.1.3 体外释放结果 | 第37-39页 |
| 3.4.2 DOX以及PDC-M纳米胶束体系对肿瘤细胞的增殖抑制作用 | 第39-40页 |
| 3.4.3 DOX以及PDC-M的细胞摄取情况 | 第40-41页 |
| 3.4.4 讨论 | 第41-44页 |
| 第4章 PDC-M的生物相容性研究 | 第44-54页 |
| 4.1 主要材料与试剂 | 第44-45页 |
| 4.2 主要实验仪器 | 第45页 |
| 4.3 实验方法 | 第45-48页 |
| 4.3.1 CCK8法检测PDC-M纳米胶束体系对内皮细胞的生物相容性 | 第45-46页 |
| 4.3.2 BSA法检测PDC-M纳米胶束体系的生物相容性 | 第46-47页 |
| 4.3.2.1 检测波长的确定 | 第46页 |
| 4.3.2.2 DOX溶液标准曲线的绘制 | 第46页 |
| 4.3.2.3 蛋白吸附实验 | 第46-47页 |
| 4.3.3 溶血性实验 | 第47-48页 |
| 4.3.3.1 2%红细胞混悬液的制备 | 第47页 |
| 4.3.3.2 溶血率的测定 | 第47-48页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第48-54页 |
| 4.4.1 PDC-M纳米胶束体系对内皮细胞的生物相容性 | 第48-49页 |
| 4.4.2 PDC-M纳米胶束的BSA吸附率 | 第49-51页 |
| 4.4.2.1 检测波长的确定 | 第49页 |
| 4.4.2.2 BSA标准曲线 | 第49-50页 |
| 4.4.2.3 BSA吸附率 | 第50-51页 |
| 4.4.3 PDC-M纳米胶束体系的溶血率测定 | 第51-52页 |
| 4.4.4 讨论 | 第52-54页 |
| 第5章 PDC-M的体内药代动力学研究 | 第54-64页 |
| 5.1 主要材料与试剂 | 第54页 |
| 5.2 主要实验仪器 | 第54-55页 |
| 5.3 实验方法 | 第55-57页 |
| 5.3.1 阿霉素和柔红霉素储备液以及标准液的配制 | 第55页 |
| 5.3.2 HPLC分析方法的建立 | 第55-56页 |
| 5.3.2.1 色谱条件 | 第55页 |
| 5.3.2.2 血浆样品处理方法 | 第55-56页 |
| 5.3.2.3 建立标准曲线 | 第56页 |
| 5.3.3 血药浓度分析方法的评价 | 第56-57页 |
| 5.3.3.1 方法专属性 | 第56页 |
| 5.3.3.2 回收率的测定 | 第56-57页 |
| 5.3.3.3 精密度的测定 | 第57页 |
| 5.3.4 PDC-M体内药代动力学评价 | 第57页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第57-64页 |
| 5.4.1 方法专属性 | 第57-59页 |
| 5.4.2 标准曲线 | 第59页 |
| 5.4.3 血药浓度分析方法的评价 | 第59-60页 |
| 5.4.4 SD大鼠体内药动学研究 | 第60-62页 |
| 5.4.5 讨论 | 第62-64页 |
| 第6章 结论 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-72页 |
| 综述 Targeted Delivery Systems Based on Polymeric Nanoparticles for Biomedical Applications | 第72-110页 |
| Referances | 第94-110页 |
| 作者攻读学位期间的科研成果 | 第110-112页 |
| 致谢 | 第112页 |
