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冰岛硫化叶菌Sulfolobus islandicus新型P-loop NTPase酶的结晶学及生化性质研究

摘要第6-8页
Abstract第8-9页
第一章 绪论第10-23页
    1.1 古菌概述第10-12页
    1.2 P-loop NTPase的分类与特点第12-14页
    1.3 同源重组修复途径及Holliday junction解离酶第14-20页
        1.3.1 同源重组修复途径第14-17页
        1.3.2 HJ解离酶介绍第17-20页
    1.4 SisPINA前期研究进展第20-22页
        1.4.1 SisPINA的发现第20-21页
        1.4.2 SisPINA前期研究进展第21-22页
    1.5 本论文研究目的及意义第22-23页
第二章 SisPINA及其突变体蛋白的表达、纯化和结晶第23-36页
    2.1 材料与方法第23-26页
        2.1.1 菌株与质粒第23页
        2.1.2 试剂与主要仪器设备第23页
        2.1.3 培养基第23页
        2.1.4 主要溶液配方第23-24页
        2.1.5 蛋白的表达与纯化第24-25页
        2.1.6 SisPINA及其突变体蛋白晶体的筛选及优化第25-26页
            2.1.6.1 蛋白晶体形成原理第25页
            2.1.6.2 蛋白晶体初筛第25页
            2.1.6.3 蛋白晶体优化第25-26页
    2.2 结果与分析第26-34页
        2.2.1 SisPINA蛋白的表达与纯化第26-29页
        2.2.2 SisPINA蛋白的结晶与优化第29-31页
        2.2.3 SisPINAE323K(1-473)蛋白的表达与纯化第31-33页
        2.2.4 SisPINAE323K(1-473)蛋白的结晶与优化第33-34页
    2.3 本章小结第34-36页
第三章 SisPINA保守位点的突变分析第36-48页
    3.1 材料与方法第36-38页
        3.1.1 菌株与质粒第36页
        3.1.2 试剂与主要仪器设备第36页
        3.1.3 培养基第36-37页
        3.1.4 主要溶液配方第37页
        3.1.5 SisPINA各突变体重组质粒的构建第37-38页
        3.1.6 SisPINA各突变体蛋白的表达与纯化第38页
        3.1.7 ATPase活性检测第38页
    3.2 结果与分析第38-46页
        3.2.1 SisPINA及其同源蛋白同源序列比对第38-40页
        3.2.2 SisPINA各突变体表达质粒的构建第40-41页
        3.2.3 SisPINA各突变体蛋白的表达与纯化第41-42页
        3.2.4 SisPINA及其突变体蛋白ATPase活性分析第42-46页
    3.3 本章小结第46-48页
第四章 SisPINA与SisHjc相互作用的体外生化分析第48-58页
    4.1 材料与方法第48-50页
        4.1.1 菌株与质粒第48页
        4.1.2 试剂与主要仪器设备第48页
        4.1.3 培养基第48页
        4.1.4 SisHjc蛋白表达与纯化第48-49页
        4.1.5 DNA底物的制备第49-50页
        4.1.6 核酸内切酶活性检测原理和方法第50页
    4.2 实验结果第50-55页
        4.2.1 SisHjc表达与纯化第50-51页
        4.2.2 SisPINA对Hjc解离酶活性的影响第51-53页
        4.2.3 SisPINA突变体对SisHjc解离酶活性的影响第53-55页
    4.3 本章小结第55-58页
第五章 结论与展望第58-60页
    5.1 结论第58-59页
    5.2 展望第59-60页
附录第60-67页
    附录一: 试剂及耗材第60-61页
    附录二: 主要仪器设备第61-62页
    附录三: 本文所用的PCR引物第62-64页
    附录四: 本文使用和构建重组质粒第64-65页
    附录五: 主要溶液配方第65-66页
    附录六 PCR扩增及双酶切体系第66-67页
参考文献第67-71页
致谢第71-72页
学论文评阅答辩情况表第72页

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