摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
1 绪论 | 第11-18页 |
1.1 紫外线诱导高等植物花青素合成 | 第11-13页 |
1.1.1 植物体光受体研究进展 | 第11-12页 |
1.1.2 植物光受体介导的花青素合成的研究进展 | 第12-13页 |
1.1.3 Aft型番茄花青素合成 | 第13页 |
1.2 突变体库研究进展 | 第13-16页 |
1.2.1 正向遗传学构建突变体库研究进展 | 第14页 |
1.2.2 反向遗传学构建突变体库研究进展 | 第14-15页 |
1.2.3 番茄EMS诱变突变体库研究进展 | 第15-16页 |
1.3 番茄遗传转化体系的建立及其进展 | 第16页 |
1.4 本研究的目的及意义 | 第16-18页 |
2 Aft型番茄特性分析 | 第18-26页 |
2.1 引言 | 第18页 |
2.2 材料与试剂 | 第18-19页 |
2.2.1 材料 | 第18页 |
2.2.2 试剂及器材 | 第18-19页 |
2.3 方法 | 第19-21页 |
2.3.1 不同波长的光处理未成熟期Aft番茄果实 | 第19页 |
2.3.2 花青素测定 | 第19页 |
2.3.3 RNA提取 | 第19-20页 |
2.3.4 反转录cDNA | 第20页 |
2.3.5 实时定量PCR引物设计 | 第20-21页 |
2.4 结果与分析 | 第21-24页 |
2.4.1 Aft野生型番茄花青素含量分析 | 第21-22页 |
2.4.2 Aft野生型番茄总RNA提取 | 第22页 |
2.4.3 Aft野生型番茄实时荧光定量PCR分析 | 第22-24页 |
2.5 讨论 | 第24-25页 |
2.6 本章小结 | 第25-26页 |
3 Aft型番茄EMS突变体库的构建及筛选 | 第26-36页 |
3.1 引言 | 第26页 |
3.2 材料 | 第26页 |
3.2.1 实验材料 | 第26页 |
3.2.2 实验试剂及仪器 | 第26页 |
3.3 试剂配制 | 第26-27页 |
3.3.1 PH=7 的 0.1M磷酸缓冲液配制 | 第26页 |
3.3.2 不同浓度EMS诱变剂配制 | 第26-27页 |
3.4 方法 | 第27-28页 |
3.4.1 不同浓度EMS诱变剂诱变种子 | 第27页 |
3.4.2 番茄EMS突变体库构建及繁育 | 第27-28页 |
3.4.3 突变体库M2代田间表型的调查 | 第28页 |
3.5 结果统计及分析 | 第28-34页 |
3.5.1 EMS浓度梯度筛选 | 第28-29页 |
3.5.2 番茄EMS突变体库构建 | 第29页 |
3.5.3 番茄突变体库筛选 | 第29-34页 |
3.6 讨论 | 第34-35页 |
3.6.1 EMS诱变浓度与突变体库的构建 | 第34-35页 |
3.6.2 番茄突变体库构建及其应用价值 | 第35页 |
3.7 本章小结 | 第35-36页 |
4 花青素合成缺失突变体at15-193 特性分析 | 第36-41页 |
4.1 引言 | 第36页 |
4.2 材料与试剂 | 第36页 |
4.2.1 材料 | 第36页 |
4.2.2 试剂及器材 | 第36页 |
4.3 方法 | 第36页 |
4.4 结果与分析 | 第36-39页 |
4.4.1 突变体花青素含量分析 | 第36页 |
4.4.2 突变体RNA提取 | 第36-37页 |
4.4.3 突变体qRT-PCR分析 | 第37-39页 |
4.5 讨论 | 第39-40页 |
4.6 本章小结 | 第40-41页 |
5 Aft型番茄再生体系的优化 | 第41-48页 |
5.1 引言 | 第41页 |
5.2 材料与试剂 | 第41-42页 |
5.2.1 试验材料 | 第41页 |
5.2.2 试剂及其配制 | 第41-42页 |
5.3 方法 | 第42-43页 |
5.3.1 外植体消毒 | 第42页 |
5.3.2 接种及筛选分化培养基 | 第42页 |
5.3.3 生根培养基 | 第42-43页 |
5.4 结果与分析 | 第43-47页 |
5.4.1 不同浓度激素配比对诱导生芽的影响 | 第43-45页 |
5.4.2 激素浓度对生根的影响 | 第45-46页 |
5.4.3 试管苗移栽的结果 | 第46-47页 |
5.5 讨论 | 第47页 |
5.5.1 植物激素对外植体分化的影响 | 第47页 |
5.5.2 植物激素对生根的影响 | 第47页 |
5.6 本章小结 | 第47-48页 |
结论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-55页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第55-56页 |
致谢 | 第56-57页 |